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实验专栏丨当苏木精碰上伊红,会碰撞什么火花?

2017-08-17 中洪博元医学实验帮



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作为一条合格的实验汪都知道,苏木精和伊红是HE染色中不可缺少的染色剂,苏木精为碱性天然染料,可使细胞核着色。伊红Y是一种化学合成的酸性染料,在水中离解成带负电荷的阴离子,与蛋白质的氨基正电荷(阳离子)结合而使细胞浆染色。


当着两者碰撞时,成功则是一张质地上乘的HE切片,那么失败又会是如何?今天中洪君带大家来看看那些碰撞失败的案例吧!这都是血和泪的教训啊!


问题一:细胞核呈红、棕色改变

原因:主要有苏木精染色液过度氧化和切片在苏木精染液染色后返蓝不足。


对策:首先,每次染色之前检查苏木精染色液的染色能力,发现氧化过度应及时更换。其次,可用流水、温水或弱碱性溶液如稀氨水、0.2%碳酸氢钠等,在苏木精染色后,给切片以足够的蓝化时间。


问题二:细胞核染色苍白暗淡

原因:此类问题即苏木精染色太淡,可能有3个影响因素,切片在苏木精染色液停留时间太短;苏木精染色液过度氧化,失去染色能力,不能再继续使用;分化步骤处理时间过长。如果是骨组织细胞核暗淡,则多数是由于脱钙过度造成。


对策:切片重新染色。如果组织在酸性固定液如Zenk2er、Bouin及非中性缓冲甲醛液固定时间过长,细胞核染色能力将减弱,须增加其在苏木精染色液的时间,或用一些方法增加组织的嗜碱性,以改善细胞核的着色。例如:建议上述组织切片最好使用Weigert铁苏木精染色液;如果组织是用Zenker液固定的,可将切片脱蜡后放在5%碳酸氢钠溶液3~4h,流水冲洗5min后染色;如果组织是用Bouin液固定的,可将切片脱蜡后放在5%碳酸锂1h,流水冲洗10min后染色。


问题三:苏木素染色过度,返蓝不充分

原因:主要有苏木精染色液过度氧化和切片在苏木精染液染色后返蓝不足。


对策:首先,每次染色之前检查苏木精染色液的染色能力,发现氧化过度应及时更换。其次,可用流水、温水或弱碱性溶液如稀氨水、0.2%碳酸氢钠等,在苏木精染色后,给切片以足够的蓝化时间。


问题四:切片中出现蓝黑色沉淀物


原因:苏木精染色液中的金属膜,黏附在玻片上。


对策:每天染色前仔细过滤苏木精染色液,或建议使用半氧化苏木精染色液,如Gill苏木精染色液,可以避免过多的金属膜产生。


问题五:切片在脱蜡后出现大片白色斑点

原因:由于烤(烘)片温度太低,玻片在脱蜡前没有充分烤(烘)干;切片在二甲苯停留时间不足,或二甲苯使用过久,造成脱蜡不尽。


对策:如果玻片是由于没有烤(烘),先用无水乙醇处理去除玻片上的水分,然后重新用二甲苯脱去石蜡。如果烤(烘)干不足的现象比较严重,可能导致切片脱落,则无法补救。如果白色斑点是由于切片在二甲苯停留时间不足造成,或使用的二甲苯过久,切片则需退回到二甲苯停留时间相对长些,或更换二甲苯,脱色、漂白、重新染色。 


问题六:细胞核灰蓝


原因:可能的原因是由于组织处理温度过高、过热,在石蜡停留的时间过长;或者固定时间太短,接下来就直接在高浓度的乙醇中行脱水处理。


对策:理论上来说,加热处理仅在组织浸蜡步骤才使用,组织不能在热的蜡液中停留过长时间。如果由于某些原因不能进行下步包埋处理,完成浸蜡处理后的组织,可将组织连同塑料包埋盒一并放置在室温空气中,冷却凝固,以备包埋。待需要包埋时再重新加温直至石蜡融化即可。组织在处理前必须确保固定良好,脱水最好能从低浓度的乙醇开始。


问题七:HE染色不规则或不均匀

HE染色不规则或不均匀,从小斑点到大面积区域,散布切片各处,细胞核染色质不够细致


原因:由于使用密闭式组织处理机故障,如密闭不严,导致组织浸蜡时含有水和(或)固定剂。


对策:如果使用开放式组织处理模式,在相对湿度较高的地方,用甲苯替代二甲苯。如果使用密闭式组织处理模式,经常仔细检查仪器设备的各项功能是否完好,一旦发现密闭垫圈老化,应及时更换。

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