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实验专栏丨免疫组化结果分析这条大鱼,岂是说钓就钓的

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科研工具作图| 实验 SCI |统计分析


很多时候,我们千辛万苦地染出了一张张漂亮的免疫组化片子。但是却不知道如何正确地分析,得出理想的结果。这实在是一件憾事。


其实,免疫组化的protocol教科书和实验手册上面都有。不再重复了。这里,中洪君根据自己做免疫组化数年的经验和体会,谈谈应该注意的一些事项和技巧,并且有独门绝招献上。当免疫组化撞上难点,实验老司机教你这样做!


免疫组化实验步骤


1.  石蜡切片置于67℃烘箱中,烘片2小时,脱蜡至水,用pH7.4的PBS冲洗三次,每次3分钟(3×3’)。


2.  取一定量pH=6.0柠檬酸盐缓冲液,加入微波盒中,微波加热至沸腾,将脱蜡水化后的组织切片置于耐高温塑料切片架上,放入已沸腾的缓冲液中,中档微波处理10分钟,取出微波盒流水自然泠却,从缓冲液中取出玻片,先用蒸馏水冲洗两次,之后用PBS冲洗2×3’。(注:不是所有的抗体都需要微波修复的,视具体情况而定)


3.  每张切片加1滴3%H2O2,室温下孵育10分钟,以阻断内源性过氧化物酶的活性。PBS冲洗3×3’。

实验更详细步骤,戳这里:一文读懂,免疫组化原理及实验步骤——实验外包

中洪实拍图


石蜡切片和冰冻切片的选择比较



石蜡切片

冷冻切片

应用对象

广泛应用常规制片

手术中的快速病理诊断

保持时间

持久保存

保存时间较短

优点

1、 细胞定位准确

2、 组织细胞形态结构保存完好,

3、 保存时可放在室温下保存

1、 简便。

2、 快速,用时短

3、 组织变化不大

4、 能很好的保存脂肪、类脂等成分

5、 较好的保存抗原活性及酶类。

缺点

1、步骤繁多,制片中抗原活性有所降低

1、不易做连续切片

2、切取的组织不能过大


一抗的选点和技巧


(1)单克隆和多克隆抗体的选择。单克隆和多克隆抗体的内在特征决定了它们用于IHC/ICC时的优势和限制。单克隆抗体由单个B细胞克隆产生,代表了同质群体,能够高亲和力高特异性地与单个表位结合。这在检测蛋白家族的某个成员时特别有用,因为蛋白家族有着高比例的氨基酸同源性。


抗体结合往往依赖于目标蛋白维持其天然的构想状态。与其他蛋白的相互作用、翻译后修饰、温度、pH、固定和盐浓度都会影响抗体接近目的表位。多克隆抗体是异质的,可识别多个表位,因此它们较少受到蛋白构象变化的影响。

一般而言,多克隆抗体在一定pH和盐浓度范围内也比单克隆抗体更为稳定。基于这些原因,多克隆抗体更常用于IHC/ICC实验。


(2)应用范围的选择。有的一抗只能用于Western Blotting,或免疫组化、免疫荧光、免疫沉淀等;甚至表明石蜡切片或冰冻切片。


(3)种属反应性的选择。这一点很重要,表明这种抗体可能存在种属差异,且这种抗体适合检测哪种种属动物体内的抗原。


(4)种属来源,一般兔来源的多是多克隆;而小鼠来源的多是单克隆,但也有另外。根据此来源来选择相应的二抗。


(5)生产厂家的选择。


封闭血清的选择原则


(1)膜上或切片上有剩余的位点可以非特异性吸附抗体,造成后续结果的假阳性。


(2)封闭血清一般是和二抗同一来源的,血清中动物自身的抗体,预先能和组织中有交叉反应的位点发生结合,否则在后面的步骤中如果和二抗发生结合,会造成背景。


(3)也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能与一抗来源一致。


PBS 的清洗方式选择、次数和时间的选择


(1)单独冲洗,防止交叉反应造成污染。 


临床上每天检测的病例很多,所用的抗体种类及项目也多,如果在加入一抗孵育完后,将它们在一个缸内洗,这样就会造成交叉污染,影响最后的结果。正确的做法是单独地进行冲洗,冲洗的 PBS 为一次性,保证切片没有相互交叉污染的机会。

(2)温柔冲洗,防止切片的脱落。


冲洗切片,取出切片,将 PBS 从上轻轻地冲洗,让 PBS 自上而下流下来,不要拿起切片将 PBS 对准切片冲洗,这样由于冲出的 PBS 有一定的冲击力,很容易使切片周边引起松动,导致切片的脱落。


(3)冲洗的时间要足够,才能彻底洗去结合的物质。


冲洗切片有人提出用微振荡器振染,振下未结合的各种物,使之不产生背景,此种做法一是浪费时间,二是很容易导致切片的脱落。切片的冲洗据实践认为,用一小烧杯柔和地于切片上冲洗,就能彻底冲洗去未结合的物质,无需附加其它条件,冲洗好于切片上再注入 PBS,持续 2 min 左右就完全足够了。


一抗 4℃ 孵育后为什么要进行 37℃复温?


(1)一方面,防止切片从 4ºC 直接放入 PBS 易脱片。


(2)另一方面,使抗原抗体结合更稳定。一般不需要,但对表达较弱的抗原可能有用,4ºC 和 37ºC 时分子运动方式不同,前者分子碰撞机率和运动速度小于后者,后者结合更快,但敏感性也提高了并易造成非特异染色。


免疫组化结果分析


(1)阳性着色细胞计数法。在 40 * 光镜下,随机选择不重叠的 10 个视野,人工或机器计数阳性着色细胞,每组 3-6 张不同动物组织切片,然后进行组间比较即可。


(2)灰密度分析法。通过在不同组别和不同动物组织切片上选择相同区域、相同条件下用 image j 进行灰密度分析,然后进行统计分析即可。


(3)评分法。通过在光学显微镜下对组织切片分别按染色程度(0-3 分为阴性着色、淡黄色、浅褐色、深褐色)、阳性范围进行评分(1-4 分为 0-25%、26-50%、51-75%、76-100%),最终可以分数相加,再进行比较。


对于以上这几种方法,各有利弊,请细心选择。要想得到正确结果的前提是你要做出着色均匀、背景很浅的高质量切片。 



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