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ELISA实验操作中值得关注的细节大盘点
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作者:解螺旋·子非鱼
如需转载请注明来源:解螺旋·医生科研助手
酶联免疫吸附测定(ELISA)因其具有敏感性高、特异性强等优点,被广泛应用于临床检测中的各种抗原和抗体的测定。尽管ELISA操作简单,但是小实验里也蕴含着大文章,ELISA操作各个环节对实验的检测效果影响较大,稍不注意就会产生假阳性或假阴性的结果。现在小鱼就跟大家818应用ELISA应该了解的一些常识。
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回复ELISA,即可查看这几类ELISA操作的具体原理及其protocol。
试剂准备 在实验开始前,需将试剂盒从冰箱中拿出来在室温放置20min,再进行测定,以使试剂盒在使用前与室温平衡,也可使温育时反应孔内的温度能较快的达到所要求的高度,以满足测定要求。 其次,目前商品中ELISA试剂盒中的洗板液均需在实验过程中对其所提供的浓缩液进行稀释配制,因此稀释时所用的蒸馏水或去离子水应该保证质量。此外,底物反应液应该反应显色前进行现配现用。同时,为了保证实验的均一性,实验中所有试剂在加样前必须摇匀。 加样 因ELISA的灵敏度较高,则应该按规定将血清稀释至适当的倍数,以降低非特异性反应,使特异性的抗原抗体反应充分体现出来。 加样品时,单孔用量要求:≥20ul/指标,如需要做2个复孔则血量≥60ul/指标。如果用量充足,最好提供50ul/孔/指标。具体用量也需根据试剂盒的要求而定。 吸取样品时,加样枪头不应粘附多余的液体;加样时不可90度向孔中滴加液体,否则会导致液体残留在吸头上,加样不准确。正确加样方法应为45度,吸头贴着孔壁和液面的交界处加入。
加样时速度不可过快,否则无法保证微量加样的准确性和均一性;要避免样品加在孔壁上部而产生非特异性吸附。不可将样品溅出以避免对邻近孔产生污染。 孵育 一般,孵育时间与温度成反比,即温度越高,所需时间相对较短。最常用的孵育温度为37℃,孵育1-2h。 孵育时应贴封片或加盖,避免样品或稀释液蒸发,吸附于孔壁,难于清洗。孵育时,反应板不宜叠放,以保证各板的温度都能迅速平衡。同时,应严格控制孵育时间,避免因时间过长导致紧附于反应孔周围的非特异性结合。 孵育时,要尽量排除“边缘效应”,即96孔板的外周孔显色较中心孔深。究其原因,是因为96孔板周孔与中心孔的表面或热力学特征不同。因此,可采用水浴或在将反应溶液加入至板孔中时,将板和溶液均加热至孵育温度(37℃)。 洗板 为了确保ELISA测定的特异性,洗板可清除非特异性结合物质,减少背景信号,增加分析的信噪比。 手工洗板时,拍板要垂直,避免交叉污染,用力不能过猛,防止抗原抗体复合物脱离。使用半自动洗板时,应经常检查冲洗头是否通畅,若被杂物堵塞时可用注射器针头挑出。为了达到较好的洗涤效果,实验室可采用机器与人工洗涤相结合的方法,即在机器洗涤后再进行人工洗板1-2次。 以HRP作为标记酶的ELISA试剂盒中使用的洗板液一般为含0.05% Tween20的中性PBS,其中,吐温20的浓度可在0.05%-0.2%之间,高于0.2%时,可使包被在固相上的抗原或抗体解吸附而减低实验的灵敏度。 显色 目前以HRP作为标记酶的商品ELISA试剂盒中,如以TMB为底物,则提供的底物为A和B两瓶应用液;如以OPD为底物,则试剂盒提供OPD片剂或粉剂,临用前配制。显色剂配制后放置时间过长(肉眼可见浅蓝色的TMB时)要弃之不用。 在加入底物开始显色反应前,最好是先检查一下底物溶液的有效性,即可将A和B两种液各加一滴于清洁的空板孔或eppendorf管中,观察是否有显色出现,如有,则说明底物已变质。 显色反应条件一般为37℃或室温反应15-30分钟。加终止液时,要避免气泡产生而引起的假阳性。 读板 读板时要保证酶标板清洁,同时也要注意酶标仪的波长是否已调至合适或所用滤光片是否正确。 通常,单波长读板的测定值一般是指以对显色具有最大吸收的波长如450nm或492nm进行比色测定;而双波长读板的测定值一般是敏感波长如450nm的吸光值与非敏感波长下如630nm的吸光值之差,可排除板内脏物的影响。 同时,由于ELISA测定中单个空白孔的非特异吸收上有一定程度的不确定性,也就是说每次测定或同次测定空白孔位置的不同均有可能得到不同吸光度测定值,故而在ELISA测定比色时,最好是使用双波长比色。
下面则简单介绍用excel绘制标准曲线的方法 1)输入相应数据
2)选中相应数据
3)选择表格中,菜单栏中的插入|散点图中第一个类型
6)或者在较低版本的excel中,在“图表工具”选项中,选择趋势线|线性趋势线。
7)选中图表中的趋势线,右键,选择“设置趋势线格式”,在弹出的对话框中,将“显示公式”勾选上,点击关闭,也获得标准曲线。
8)可将试验管中所测的吸光度值代入图表中的公式Y=1.001x+0.0171后可得到所求成分的含量,即X的值。
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