Hi-C近100%的建库成功率是怎么炼成的?
摘要
百迈客生物科技有限公司自2016年初以来,利用Hi-C技术进行染色体水平的基因组组装及染色体三维构象的研究,至今保持着近100%的建库成功率,那么,我们有什么秘诀呢?
Hi-C是将高通量测序(High-throughput sequencing)技术与染色体构象捕获技术(Chromosome conformation capture,简称为3C)相结合而衍生的一种新技术。Hi-C染色体构建是利用Hi-C技术将零散的基因组序列片段组装到染色体水平,并进一步明确这些序列在染色体上的顺序及方向。
近年来,已发表的人、山羊、蚊子、酵母、大麦、二粒小麦等基因组均采用Hi-C技术进行辅助组装,获得染色体水平的基因组,证明了Hi-C辅助基因组组装技术在动植物、真菌染色体水平基因组组装的高可靠性。
同时利用Hi-C技术可以揭示基因组的一般三维结构特征,包括从隔室(A/B Compartments)到拓扑相关结构域(TAD),最后到环(loop)的染色质的这种层级结构,对于研究全基因组范围内DNA在空间上的互作关系,构建高分辨率的染色体三维结构,开发基因的远程调控元件,构建染色体跨度单体型等具有重要的作用。目前,已在人、果蝇、酵母、拟南芥、水稻和棉花等物种成功构建了基因组三维结构,并完成了对不同样本基因组三维结构的比较分析。
Hi-C染色体构建的优势
1)单个体即可完成,无需构建群体;
2)定位效率更高;
3)可以对已组装的基因组进行纠错。
Hi-C三维构象研究内容
1)绘制全基因组的Hi-C map,包括Cis/Trans分析;
2)Compartment A/B 鉴定与分析,包括与Chip-seq和RNAseq联合分析;
3)基因/重复序列互作分析,包括与RNAseq联合分析;
4)TAD鉴定与分析,包括Chip-seq和RNAseq联合分析;
5)绘制全基因组LOOP模型图,需DNase–seq,并与Chip-seq和RNAseq联合分析。
6)多样本三维结构差异分析:Compartment A/B、TAD、Loop差异分析。
百迈客Hi-C文库制备心得
Hi-C文库的成功制备有利于染色体构建或染色体互作分析的顺利实施。百迈客在文库制备方面细心钻研,最终实现近100%的Hi-C高质量文库的建库成功率。
截止2017年底,百迈客Hi-C实验平台已积累了大量植物、动物(哺乳动物、昆虫、水生动物等)、微生物等的项目经验,现跟大家分享如下百迈客技术团队在Hi-C文库制备上的心得 —— 不足之处多多指教!!!
3.1 严把样品关
1)对常规样品的严格控制;
样本质量对文库制备及数据分析的结果是至关重要的,我们对样本的基本要求:在满足正常取样的前提下植物样品寄送活体,动物样品最佳为新鲜血液。此外,我们会对所有实验样品进行二次筛选,在样品选择上不应付、不马虎,以达到优中选优的高标准。
2)对疑难样品的不离不弃;
某些特殊样本可能很难达到我们的取样要求,比如:部分植物样品不易取样、样品量难以达到要求、样品生长较老等等;部分动物样品濒危难取、难以获得活体样品、样品个体太小等等。
但我们不会对这样的样品直接拒之门外,我们会针对样品的具体情况制定“定制化”的文库制备方案,从多角度,采用多种方法来解决此疑难项目。
3)对超难样品的刻苦钻研;
经验是逐步积累起来的,技术是慢慢摸索的,我们在遇到一些非常特殊的样品时不会因为没有尝试就轻言放弃。反之,我们会与老师沟通交流,了解样品相关背景,并在现有方案的基础上,结合文献及研发经验从多维度进行尝试,最终研发出一套针对“此种项目此种样品”的特异性方案。
3.2 技术路线多元化
不同物种、不同样品采用多种技术路线,以近似“定制化”的服务构建高质量的文库;
百迈客Hi-C建库成果分享
I. 植物(被子植物、裸子植物、苔藓植物等)
百迈客 Hi-C平台在植物领域拥有非常丰富的项目经验,植物一次建库成功率在97%以上,可为您提供不同物种、不同样品状态(低龄幼苗、组培苗、成熟植株幼叶、成熟植株老叶片)的建库服务。很多物种所对应文库的Valid Interaction Pairs(%)值在80%以上,最高达92.61%,甚至一些多糖多酚物种(如药用植物等)文库的Valid Interaction Pairs(%)值也已经达到在75%及以上水平。
同时,基于丰富的项目经验,平台已帮助客户解决了不少疑难项目,其文库Valid Interaction Pairs(%)值也维持在较高水平。
II. 动物(哺乳动物、昆虫、水生动物等)
目前,百迈客 Hi-C平台在动物领域已实现多个技术突破,可为您提供不同物种、不同样品状态(冻存、活体)的建库服务。动物样品文库的Valid Interaction Pairs(%)平均值在60%,最高达86.68%。
III. 微生物(真菌)
百迈客 Hi-C平台在微生物领域也已实现多个技术突破,可为您提供不同物种的建库服务。如真菌样品文库的Valid Interaction Pairs(%)平均值在72%,最高达84.6%。
2018,百迈客 Hi-C服务平台
继续与您携手共进,
为您的科学研究锦上添花,
助您再创佳绩!!!
延伸阅读:
3、 Nature genetics深度解读|榴莲基因组揭示其香味合成机理
主要参考文献:
1.Lieberman-Aiden E, Van Berkum N L, Williams L, et al. Comprehensive mapping of long-range interactions reveals folding principles of the human genome[J]. science, 2009, 326(5950): 289-293.
2. Burton, J.N., et al., Chromosome-scale scaffolding of de novogenome assemblies based on chromatin interactions. Nat Biotechnol, 2013. 31(12): p. 1119-25.
3. Bickhart D M, Rosen B D, Koren S, et al. Single-molecule sequencing and chromatin conformation capture enable de novo reference assembly of the domestic goat genome[J]. Nature Genetics, 2017.
4.Dudchenko O, Batra SS, Omer AD, et al. De novo assembly of the Aedes aegypti genome using Hi-C yields chromosome-length scaffolds.[J]. Science , 2017.
5.Marie-Nelly, H., Marbouty, M., Cournac, A., Flot, J. F., Liti, G., Parodi, D. P., ... & Koszul, R. (2014). High-quality genome (re) assembly using chromosomal contact data. Nature communications, 5, 5695.
2.Mascher M, Gundlach H, Himmelbach A, et al. A chromosome conformation capture ordered sequence of the barley genome[J]. Nature, 2017, 544(7651): 427-433.
3.Avni, R., Nave, M., Barad, O., Baruch, K., Twardziok, S. O., Gundlach, H., ... & Jordan, K. W. (2017). Wild emmer genome architecture and diversity elucidate wheat evolution and domestication. Science, 357(6346), 93-97.
4.Rao, Suhas , S.P, et al. A 3D Map of the Human Genome at Kilobase Resolution Reveals Principles of Chromatin Looping[J]. Cell, 2014, 159(7):1665-80.
5.Wang, Q., Sun, Q., Czajkowsky, D. M., & Shao, Z. (2018). Sub-kb hi-c ind.melanogasterreveals conserved characteristics of tads between insect and mammalian cells:. Nature Communications, 9.
6.Kakui, Y., Rabinowitz, A., Barry, D. J., & Uhlmann, F. (2017). Condensin-mediated remodeling of the mitotic chromatin landscape in fission yeast. Nature genetics, 49(10), 1553.
7.Liu C, Wang C, Wang G, et al. Genome-wide analysis of chromatin packing in Arabidopsis thaliana at single-gene resolution[J]. Genome Research, 2016, 26(8):1057.
6.Wang C, Liu C, Roqueiro D, et al. Genome-wide analysis of local chromatin packing in Arabidopsis thaliana. [J]. Genome Research, 2015, 25(2):246.
7.Liu, C., Cheng, Y. J., Wang, J. W., & Weigel, D. (2017). Prominent topologically associated domains differentiate global chromatin packing in rice from Arabidopsis. Nature plants, 3(9), 742.
8.Wang M, Tu L, Lin M, et al. Asymmetric subgenome selection and cis-regulatory divergence during cotton domestication[J]. Nature Genetics, 2017.
9.Wang, M., Wang, P., Lin, M., Ye, Z., Li, G., Tu, L., ... & Zhang, X. (2018). Evolutionary dynamics of 3D genome architecture following polyploidization in cotton. Nature plants, 1.
分子实验中心 刘福龑 于志强 穆西玉 | 文案
吴 爽 | 审核
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