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CHIP实验不理想,点这里(周三、05.25)

2016-05-25 小邦 细胞之邦

导读

细胞之邦,互助你我。感谢大家的关注,我是小邦。昨天我们对ELISA实验中常见问题进行了分析,今天我们进入的是CHIP实验。

01class信号过低

染色质片段过小:要得到小于500bp的染色质片段时,不需进行超声处理。太小的片段会使核小体被误认为核小体间的DNA而被消化掉。如果进行末端染色质免疫沉淀,通常酶消化法即能得到所需大小的染色质片段。

交联染色质免疫沉淀时交联时间过长:用甲醛交联10-15分钟,然后用磷酸盐缓冲液洗净,接着需要加入甘氨酸以终止甲醛的作用。过度交联可能会降低表位的可结合度从而减少抗体的结合。

特异性抗体结合受阻碍:在洗涤缓冲液里氯化钠浓度不要高于500mM,否则浓度过高将阻碍特异性抗体结合

有些单抗不适合做交联染色质免疫沉淀:单抗识别的表位可能会在交联过程中被掩盖,而阻碍位点识别。建议用多克隆抗体,可识别多个表位,这样就增加了免疫沉淀目标蛋白的几率

用错了抗体亲和性磁珠:蛋白A和G是细菌来源蛋白质,其对不同种的免疫球蛋白的亲和性不同。请使用特异性的亲和基质。

目标区域无足够的抗体:目标区域无表位。应有阳性对照抗体,以确认操作过程无误

02class免疫沉淀DNA时PCR扩增的问题

反应后包括无模板的阴性对照在内均出现很高的信号:实时PCR所用试剂被污染。建议使用储备液来新鲜配制溶液

样本中无DNA扩增:使用标准对照/抽样DNA以确定样本中引物均有效

03class结合区域过大使得背景过高分辨率过低片段过大:针对不同的细胞系,应优化DNA片段的大小。超声时间和酶孵育时间均应调整。建议DNA片段不要超过1.5kbp。如果用酶消化染色质,会得到175bp大小的单核苷酸酶。
04class无特异性抗体对照时出现背景过高

与蛋白A或G无特异性结合:应采用预清除处理,即在加入抗体前,将裂解的样本与磁珠混合1小时然后分离使用

某些蛋白A或G磁珠本身会产生很高的背景:某些蛋白A或G磁珠会有很高的背景。要找到一个合适的供应商,所提供的产品应在非特异性对照样本中得到背景最低最干净的结果



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