实验专栏丨细胞两种划痕实验对比你知多少?
划痕实验——作为SCI论文必备的实验之一,常用方法有两种,接下来中洪小编就带你们来看看这两种方法哪种比较适合你!
实验原理:细胞划痕(修复)法是简捷测定细胞迁移运动与修复能力的方法,类似体外伤口愈合模型,在体外培养皿或平板培养的单层贴壁细胞上,去除中央部分的细胞,然后继续培养细胞至实验设定的时间,取出细胞培养板,观察周边细胞是否生长(修复)至中央划痕区,以此判断细胞的生长迁移能力。
实验通常需设定正常对照组和实验组,实验组是加了某种处理因素或药物、外源性基因等的组别,通过不同分组之间的细胞对于划痕区的修复能力,可以判断各组细胞的迁移与修复能力。
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传统实验方法
实验步骤:
将所需的材料进行灭菌,包括直尺和marker笔
1、先用marker笔在6孔板背后,用直尺比着,均匀的划横线,大约每隔0.5~1cm一道,横穿过孔。每孔至少穿过5条线。
2、在孔中加入约5×105个细胞,具体数量因细胞种类不同而不同,接种原则为过夜后融合率达到100%。
3、第二天用枪头比着直尺,尽量垂至于背后的横线划痕,枪头要垂直,不能倾斜(不同孔之间最好使用同一只枪头)。
4、PBS洗细胞3次,去处划下的细胞,加入无血清培养基。
5、放入37℃ 5% CO2培养箱,培养。可按0,6,12,24h时间点取样,拍照(具体时间依实验需要而定)。
注意事项:
1、在用PBS缓冲液冲洗时,注意贴壁慢慢加入,以免冲散单层贴壁细胞,影响实验拍照结果。
2、一般做划痕实验,都是无血清或者低血清(<2%)否则细胞增殖就不能忽略。
3、按照6孔板背后画线的垂直方向划痕,可以形成若干交叉点,作为固定的检测点,以解决了前后观察时位置不固定的问题。
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Culture Insert方法
实验步骤:
准备材料:细胞,培养液,culture Insert,镊子。
1,准备细胞悬液:根据细胞类型将细胞悬液稀释至3-7×105个/ml,浓度控制在24小时内融合成单层。
2,在培养插件的每个孔中加入70ul细胞悬液,放入培养箱中培养。
3,细胞贴壁后,使用灭菌的镊子移除培养插件。
4,加入无血清培养基培养。
5,每隔4-6小时拍照记录。
6,根据收集图片使用Wimasis分析实验结果。
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实验对比
传统实验方法 | Culture Insert方法 | |
便捷程度 | 一般 | 非常便捷 |
成本 | 低 | 昂贵 |
划痕效果 | 划痕宽度不一 | 划痕宽度一致,可重复使用 |
损伤 | 对玻片表面包有一点损伤 | 可移除的插入元件,对玻片表面包被几乎没有损伤 |
好了,以上就是中洪小编做的这些对比了!总体来说Culture Insert实验方法更胜一筹,在经济允许的情况下,选择这种实验方法比较好哦。若实验经费不足,自己手画也是不错的选择。
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