人体在遭受病原侵袭时,在两性之间有些有趣的差异。通常,女性比男性个体会产生更强的体液免疫应答(Humoral Immunity,指的是通过B细胞产生抗体来达到保护目的的免疫机制),特别是能产生更多抗体来实现自我保护。相对于男性,女性面对很多需要抗体来抵抗的传染病都显示发病率更低、病程更弱的特点。另外,通过接种疫苗来产生保护性抗体进而预防传染病,往往也是在女性人群的效果比男性更好。这一现象有可能与女性需要怀孕哺乳并需要将抗体传递给孩子有关。但是由此带来的一个后果是,相较于男性,女性更容易容易罹患抗体介导的自身免疫病【1-3】。那么是什么具体的生物学机制在雌雄个体间引起了抗体免疫应答的强弱不同呢,即为什么体液免疫会表现出性别二态性(Sexual dimorphism of humoral immunity)呢?
2019年12月26日,清华大学祁海团队在Nature杂志上发表题为A GPR174–CCL21 module imparts sexual dimorphism to humoral immunity的文章。以小鼠为对象,研究团队发现CCL21(人CC趋化因子配体21)有一个新受体GPR174,而GPR174可以调控雄鼠的B细胞定位和抑制生发中心(germinal centres)发育,却对雌鼠却不起作用,从而揭示了体液免疫性别二态性的内在形成新机制,为增强疫苗接种效果、以及针对抗体介导自身免疫疾病的治疗提供了新思路和潜在新靶点。
抗体是B细胞接受抗原刺激、分化成浆细胞(plasma cells)后产生的。为了能更有效的分化成浆细胞、产生种类和数量更多的抗体,B淋巴细胞需要从滤泡区(follicles)转移到生发中心里,经历一个所谓“亲和力成熟”的过程。从滤泡到生发中心,B淋巴细胞在接受抗原刺激后会经历一系列迁移运动。生发中心中,一组介导受体(guidance receptors)参与了抗原活化B细胞(Antigen-activated B cells)的迁移运动,这其中包括趋化因子受体(chemokine receptors)CXCR5 【4,5】和CCR7【6,7】, 鞘氨醇-1-磷酸受体2(sphingosine-1-phosphate receptor 2,简称S1PR2)【8】和G蛋白偶联受体183(G-protein-coupled receptor,简称GPR183)【9,10】。但是,这些分子的表达水平并没有性别差异。在GPR183的启发之下,作者首先检测了一系列G蛋白偶联受体(GPCRs),发现位于X染色体上的G蛋白偶联受体GPR174在初始B细胞(naive B cells)和生发中心B细胞(germinal-centre B cells)中均有所表达。并且,过表达GPR174可以促进B细胞更易于远离生发中心而向T细胞区定位。
接下来,作者研究了在不同性别小鼠中,GPR174对生发中心的形成是否具有不同的影响。在羊红血球(sheep red blood cells,简称SRBCs)刺激7天之后,对于野生小鼠,雄鼠的生发中心尺寸明显要小于雌鼠;对于GPR174缺失的小鼠,雄鼠生发中心尺寸明显恢复,而雌鼠却没有明显变化。另外,雄鼠较低水平的脾脏浆细胞(splenic plasma cells)和抗SRBC免疫球蛋白G(anti-SRBC IgG)在缺失了GPR17的情况下,也得到了一定程度的恢复。这些结果说明,GPR174可以抑制雄鼠B细胞形成生发中心和产生浆细胞的能力,而对雌鼠没有影响。
1. Whitacre, C. C. Sex differences in autoimmune disease. Nat. Immunol. 2, 777–780 (2001).2. Klein, S. L. & Flanagan, K. L. Sex differences in immune responses. Nat. Rev. Immunol. 16, 626–638 (2016).3. Ghosh, S. & Klein, R. S. Sex drives dimorphic immune responses to viral infections. J. Immunol. 198, 1782–1790 (2017).4. Ansel, K. M. et al. A chemokine-driven positive feedback loop organizes lymphoid follicles. Nature 406, 309–314 (2000).5. Förster, R. et al. A putative chemokine receptor, BLR1, directs B cell migration to defined lymphoid organs and specific anatomic compartments of the spleen. Cell 87, 1037–1047 (1996).6. Nakano, H. et al. A novel mutant gene involved in T-lymphocyte-specific homing into peripheral lymphoid organs on mouse chromosome 4. Blood 91, 2886–2895 (1998).7. Förster, R. et al. CCR7 coordinates the primary immune response by establishing functional microenvironments in secondary lymphoid organs. Cell 99, 23–33 (1999).8. Green, J. A. et al. The sphingosine 1-phosphate receptor S1P2 maintains the homeostasis of germinal center B cells and promotes niche confinement. Nat. Immunol. 12, 672–680 (2011).9. Pereira, J. P., Kelly, L. M., Xu, Y. & Cyster, J. G. EBI2 mediates B cell segregation between the outer and centre follicle. Nature 460, 1122–1126 (2009).10. Gatto, D., Paus, D., Basten, A., Mackay, C. R. & Brink, R. Guidance of B cells by the orphanG protein-coupled receptor EBI2 shapes humoral immune responses. Immunity 31, 259–269 (2009).11. Bangasser, D. A. et al. Sex differences in corticotropin-releasing factor receptor signaling and trafficking: potential role in female vulnerability to stress-related psychopathology. Mol. Psychiatry 15, 896–904 (2010).12. Inoue, A. et al. TGFα shedding assay: an accurate and versatile method for detecting GPCR activation. Nat. Methods 9, 1021–1029 (2012).