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2016年度汇总:基因编辑CRISPR应用重大进展

黄安玲 邦耀实验室 2022-03-29
导语
2016年已经过去,我们迎来了全新的2017年,以CRISPR/Cas9为基础的基因编辑技术在过去这一年大放异彩,给我们创造了很多奇迹,成绩不菲,让基因编辑变得更加简单高效的它,正改变着医药行业,并有可能改写人类的未来。本期小编为你——我们亲爱的读者奉上2016年CRISPR/Cas9基因编辑重大进展的年终盘点,算是给大家的新年礼物,感谢你对我们的关注。


 基因编辑的明星路


首先,我们来看看基因编辑的发展历程,看过后,你一定想了解一下它究竟是什么,为何有如此殊荣。



基因编辑是什么?


基因编辑(gene-editing)的基本原理其实就类似word程序中的查找、替换或者删减过程,即人为地修饰宿主细胞DNA序列后,实现对特定的目的基因片段的“编辑”。


现今,基因编辑已经发展到第三代,包括第一代ZFN(1996年),第二代TALEN(2011年)及第三代CRISPR/Cas9(2013年),它们就像是GPS导航和剪刀的组合,GPS引导剪刀到特定基因位点进行靶向切割。(关于这三代的基本原理及简单介绍可点击查看


科学家们利用基因编辑技术在基础医学研究中构建疾病动物模型,在临床治疗中攻克各种以前难以解决的疑难杂症,在农业发展中加速动物和植物的遗传育种。


特别是2013年CRISPR/Cas9出现后,低成本和操作的简单性为基因治疗打开了一扇大门。从小鼠到人类胚胎,科学家们已经进行了广泛的临床试验[1]



CRISPR/Cas9结构图


基因编辑应用


①基因治疗:癌症,遗传病及传染病等;

②药物靶点筛选;

③动植物遗传育种等。


今天我们就一起来看看,在2016年,基因编辑有哪些突破进展值得我们关注的呢?

 

基因治疗


定义:即利用基因编辑技术在基因组水平上实现精准的分子修饰,从而达到治疗各类疾病的目的。


发展趋势:首先不得不说的是基因编辑技术对于疾病治疗的进展。如下图,对于基因治疗的研究,在最近几年特别是2013年CRISPR技术出现后,急速上升[2]




此类疾病主要包括癌症(如白血病、肺癌等),罕见遗传性疾病(血友病、杜氏肌肉萎缩症、地中海贫血症等)及感染性疾病(艾滋病、乙肝)等。下图为2016年基因编辑药物在各类疾病的数量统计,可以看到癌症首屈一指,接下来是罕见遗传病、感染性疾病及血液病等[2]



1.1 癌症治疗


基因编辑技术应用于癌症治疗,主要是指肿瘤免疫疗法。利用基因编辑(主要是CRISPR/Cas9)方法修饰T细胞,进而调动患者的免疫系统,增强肿瘤微环境抗肿瘤能力,达到杀伤肿瘤细胞的目的。


近几年来已经在多种癌症如白血病取得很好效果[3-5]。2013年肿瘤免疫疗法获十大科学突破榜首,伴随着CRISPR的出现,强强联合,使肿瘤免疫疗法突破了更多瓶颈[6]。主要包括CAR-T(嵌合抗原受体T细胞疗法)和TCR-T(T细胞受体TCR嵌合型T细胞)[7]。CAR-T在最近几年发展迅速,下面主要介绍CAR-T。


嵌合抗原受体T细胞疗法(CAR-T):属于个性化治疗方法,采用患者自身T细胞通过基因工程修饰,经过嵌合蛋白修饰的T细胞识别并攻击带有特定抗原的肿瘤细胞,体外扩增后输至病人体内,引发免疫反应从而达到抗肿瘤效果。如下图所示。



CAR-T基本原理图


T细胞在抗肿瘤免疫过程中作为核心的执行者,众多的共刺激信号和共抑制信号调节T细胞反应的强度和质量,这些抑制信号即为免疫检查点。针对免疫检查点的阻断是增强T细胞激活的有效策略之一,也是近些年抗肿瘤药物开发最热门靶点[8]


目前免疫检查点热门靶点,如下图:



 

一方面,当用慢病毒介导的转基因技术制备出CAR-T或者TCR-T细胞,再用CRISPR基因编辑技术敲掉两者中的某些基因,比如图中所示的潜在的免疫检查点,这样就可以大大增加CAR-T和TCR-T的效果和安全性。


另一方面,目前大多数CAR-T治疗使用的是患者自身的T细胞,涉及到新患者的T细胞分离,修饰和扩增,使得CAR-T治疗变得十分昂贵和耗时,严重制约了CAR-T治疗的发展。在这种情况下,CAR-T治疗比起基于抗体的检查点的癌症免疫抗体疗法(例如ipilimumab,pembrolizumab和nivolumab)更加昂贵。


但是我们如果可以产生通用的供体CAR-T细胞,CAR-T治疗将变得更快更便宜,因为“off-the-shelf”将大大增加CAR-T治疗的使用患者数量,缩短制备时间,且能够批量工业化生产。


然而,CAR-T细胞引起的移植物抗宿主病(GVHD)和被治疗者的排斥反应仍然是最大的障碍。在CRISPR/Cas9技术出现之前,ZFN和TALEN已经用于敲除T细胞中的内源性T细胞受体基因,通过这种方法来消除CAR-T细胞与被治疗者之间的排斥反应。


而CRISPR/Cas9系统的出现,将为“通用型CAR-T治疗”的发展提供更强大的火力,通过敲除T细胞上组织相容性抗原的表达来预防被治疗者免疫系统对CAR-T细胞的排斥。


CAR-T之临床试验逐年上升:美国领跑,中国后发制人


2010年以前,全球注册的CAR-T临床实验都集中在美国;


2013年起,中国301医院开始注册CAR-T的临床,且呈逐年递增趋势;


2015年,中国注册的CAR-T临床数目已经基本与美国持平,占当年全球新注册CAR-T临床总数的50%;


2016年中国已经超过美国[9]

重大进展


2016年6月:NIH批准美国Juno首个CRISPR应用于人体的临床试验

从癌症患者体内提取出免疫系统的T细胞,利用CRISPR对T细胞进行基因修饰,并将基因修饰后的T细胞输回病人体内,这样它们将靶向摧毁肿瘤细胞[10]


2016年10月:中国科学家开展全球首个CRISPR应用人体临床试验

8月,中国开始启动首个利用CRISPR编辑临床试验,治疗化疗、放疗以及其它疗法治疗无效的转移性非小细胞肺癌患者;


10月,首名患者接受了经CRISPR技术改造的T细胞(敲除PD-1基因)治疗并表示治疗进展得很顺利,患者即将接受第二次注射[11]


1.2 遗传病治疗


罕见病是指发病率极低,大部分属于基因突变导致的遗传病,且大部分没有有效药物治疗。近几年,随着CRISPR/Cas9等基因编辑技术的发展,利用基因编辑技术修复突变基因,使治愈由基因突变引起的罕见病成为可能,如β-地中海贫血、肌肉萎缩症等。


镰状细胞病(SCD)和β地中海贫血症

定义:由于编码-珠蛋白的血红蛋白β基因(HBB)的突变造成的基因疾病,细胞成镰刀状(如下图)。目前针对这类疾病的治疗主要采用定期输血和干细胞移植法,昂贵且存在很大风险。



进展:2016年8月:科学家们通过CRISPR基因编辑技术,对分离自患者的人血祖细胞(Human bloodprogenitors)中编码胎儿血红蛋白的HBG1和HBG2基因启动子位置进行突变使其过表达胎儿血红蛋白,并具有运输氧气的完整功能[12]。


10月:科学家研究发现用CRISPR/Cas9对患者造血干细胞进行基因组编辑,校正后的患者干细胞可以产生正常的血红蛋白,进而将细胞注射到小鼠体内,使其产生健康的血细胞[13]


10月:美国科学家们利用CRISPR基因编辑技术,在人体干细胞中修复了造成镰状细胞贫血病的基因[14]。             

 

B型血友病

凝血因子IX(FIX)的基因存在缺陷,从而导致出血不止以及因出血而导致的遗传疾病。


进展:2016年5月:邦耀生物刘明耀、李大力团队发现了B型血友病FIX基因的新型突变Y371D,同时找到小鼠上对应的氨基酸位点Y381D,并且利用CRISPR/Cas9技术构建的重症B型血友病小鼠模型。然后创新性的利用AAV结合CRISPR/Cas9技术进行修复,极大的提高了F9Y381D血友病小鼠的凝血能力和断尾实验中的生存率[15]。


11月:宾夕法尼亚大学科学家们通过研究首次开发出了一种双基因疗法,其能够将CRISPR/Cas9介导的基因靶向系统的关键组分运输到小鼠机体中来治疗B型血友病。


12月:费城儿童医院科学家们已经开始进行了基因治疗白血病的临床1/2期试验。病人们在临床试验中接受了单剂量基因治疗,这些患者产生接近正常水平的凝血因子IX,允许他们暂停凝血因子输注,并且在日常生活未出现出血事件[16]

 

肌肉萎缩症

杜氏肌营养不良症(DMD)是一种由于编码dystrophin蛋白的基因编码缺陷造成的隐性遗传性肌肉遗传病,每3500个新生男婴里就有一名DMD患者。


进展:2016年1月:杜克大学的科学家用CRISPR技术删除出现突变的外显子23,并引发机体自动“缝合”剩下的蛋白编码区域,制造出缩短但仍能发挥作用的新版本抗肌萎缩蛋白,使腿部的抗肌萎缩蛋白水平得到一定程度的恢复,肌肉力量增加[17]。


11月:中国科学家运用SaCRISPR/Cas9针对在恶病质中被激活进而诱导肌肉蛋白降解的myostatin信号通路,通过在体内靶向敲除肌肉中的myostatin达到了部分缓解恶病质的效果,达到延缓肌肉萎缩的治疗目的[18]


临床试验:基因编辑公司EditasMedicine计划2017年开始治疗DMD的临床人体试验。

 

先天性利伯氏黑朦

先天性黑矇症(LCA),是最早发生、最严重的遗传性视网膜病变,与数种基因包括RPE65,GUCY2D, CRX, RPGRIP1,CRBI和AIPL1等相关,美国的发病率为3.5万人/年。


临床试验:Editas实验室目前的研究表明,删除CEP290基因的那1000个碱基之后,CEP290基因的表达恢复正常。拟在2017年进行LCA10项目临床试验,将CRISPR基因编辑“工具”装载到病毒体内,再把病毒注射到患处,CRISPR可以自行对患病部位进行基因改造,使患者视力恢复正常。


1.3 病毒感染治疗


艾滋病毒HIV

之前,基于ZFNs技术治疗艾滋病CCR5的方法已经进入临床II期试验,而在经过适当的改进之后,CRISPR / Cas9系统被应用于人类细胞,为对抗外来DNA和病毒提供了新的思路。


拿HIV-1感染为例,科学家的结果表明CRISPR/Cas9系统可以破坏潜在已整合的病毒基因组,并产生长期的获得性防御机制以抵抗新的HIV-1病毒感染,表达和在人类细胞中的复制。


实验结果表明,72%的感染细胞中检测不到病毒,而且CRISPR/Cas9还同时减少了隐藏在细胞DNA内的处于休眠状态的HIV副本,更重要的是治疗能够维持对HIV的抵抗能力,避免再次被HIV所感染[19]

 

乙肝病毒Hepatitis B

乙型肝炎病毒(HBV)仍然是全球健康威胁,因为慢性HBV感染可能导致肝硬化或癌症。最新的报道通过使用相同的gRNA/Cas9系统来抑制不同基因型的HBV,并探索多种gRNA/Cas9系统的可能性和效率。通过这项研究,科学家提供了抑制病毒复制和清除不同基因型的HBV的cccDNA的可能性[19]


药物靶点的筛选


由于CRISPR/Cas9精确编辑,简单易操作的特点,使得这个技术在基因编辑领域大放异彩,更由于其相比shRNA具有更加高效的敲除效率,也使得大范围的基因功能筛选成为可能。将文库中的sgRNA和筛选marker结合在一起,便可以快速的筛选出全基因组范围内潜在的靶点基因[20]。


重大进展


2016年9月:科学家们在刚地弓形虫细胞中进行了全基因组范围的CRISPR/Cas9筛选,并找到了潜在的影响寄生虫的必需基因[21]


12月:科学家们在RNF43突变的胰腺导管腺癌(PDAC)细胞中进行了全基因组范围的CRISPR-Cas9筛选,并找到了可以用于治疗该类型癌症的潜在抗体药物[22]


12月:艾滋病毒的宿主蛋白对于病毒进入机体和自身复制来说非常重要,可能会是治疗的靶标。科学家们利用CRISPR/Cas9基因编辑技术开始寻找在艾滋病毒感染治疗的靶标。通过全基因组筛选,发现了5个宿主因子,包括HIV共受体CD4 和CCR5,酪蛋白硫酸转移酶2TPST2和溶质载体家族35成员B2(SLC35B2)及活化白细胞粘附分子(ALCAM) [23]


遗传育种


利用基因编辑技术改造动植物的基因表达,进而筛选优良的性状,实现更加高效定点的动植物育种。


重大进展


2016年4月:科学家们利用CRISPR/Cas9技术得到的工程化蘑菇已经开始种植并且售卖,通过对双孢蘑菇通过靶向编码多酚氧化酶(PPO)的基因家族使其能够抵抗蘑菇变为棕色[24]


9月:孟山都宣布与麻省理工学院Broad研究院就CRISPR/Cas9基因组编辑技术在农业中的应用达成全球许可协议,希望能够为全球的农业提供一系列的作物改进技术,培育出更好的杂交品种。


12月:冷泉港实验室(CSHL)的研究团队通过CRISPR基因编辑技术成功使番茄的开花和成熟时间提前了两周多,并且拓展了这种重要农作物的种植范围[25]


12月:中科院课题组,研究发现利用大鼠APOBEC1在水稻中开发了一种“碱基编辑”系统,它提供了一种简单高效的碱基置换方法,可用于植物研究和育种[26]

 

参考文献


[1] Doudna J A, Charpentier E. The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9[J]. Science, 2014, 346(6213): 1258096-1258096.


[2] http://bioviva-science.com/2016/04/21/first-gene-therapy-successful-against-human-aging/


[3] Teachey, D.T., Chew, A., Hauck, B., Wright, J.F., et al. (2013). Chimeric antigen receptor-modified T cells for acute lymphoid leukemia. N. Engl. J. Med. 368,1509–1518.


[4] Turtle C J, Hanafi L, Berger C, et al. Immunotherapy of non-Hodgkin s lymphoma with a defined ratio of CD8+ and CD4+ CD19-specific chimeric antigen receptor-modified T cells.[J]. Science Translational Medicine, 2016, 8(355).


[5] Brentjens R J, Davila M L, Riviere I, et al. CD19-targeted T cells rapidly induce molecular remissions in adults with chemotherapy-refractory acute lymphoblastic leukemia.[J]. Science Translational Medicine, 2013, 5(177).


[6] Liu X, Zhang Y, Cheng C, et al. CRISPR-Cas9-mediated multiplex gene editing in CAR-T cells. Cell Res. 2016 Dec 2.


[7] Engineered T cells: the promise and challenges of cancer immunotherapy.  Nature reviews. Cancer 16(9):566-581


[8] Hollie J. Jackson, Sarwish Rafiq and Renier J. Brentjens. Driving CAR T‑cells forward. Nature review. 2016 Mar 22.


[9] https://clinicaltrials.gov/.


[10] http://www.forbes.com: Team Funded By Billionaire Sean Parker Aims To Be First To Use CRISPR Gene Editing In People


[11] http://www.nature.com Chinese scientists to pioneer first human CRISPR trial.  Nature:doi:10.1038/nature.2016.20988.


[12] Traxler E A, Yao Y, Wang Y, et al. A genome-editing strategy to treat [beta]-hemoglobinopathies that recapitulates a mutation associated with a benign genetic condition[J]. Nature Medicine, 2016, 22(9): 987-990. 


[13] Mark A. DeWitt, Wendy Magis, et al. Selection-free genome editing of the sickle mutation in human adult hematopoietic stem/progenitor cells.Science Translational Medicine, 2016.


[14] Daniel P. Dever, Rasmus O. Bak, et al. CRISPR/Cas9 β-globin gene targeting in human haematopoietic stem cells. Nature 539, 384–389.


[15] Guan Y, Ma Y, Li Q, et al. CRISPR/Cas9‐mediated somatic correction of a novel coagulator factor IX gene mutation ameliorates hemophilia in mouse[J]. EMBO molecular medicine, 2016, 8(5): 477-488.


[16] http://medicalxpress.com: After One Dose of Gene Therapy, Hemophilia B Patients Maintain Near-Normal Levels of Clotting Factor.


[17] Tabebordbar M, Zhu K, Cheng J K, et al. In vivo gene editing in dystrophic mouse muscle and muscle stem cells.[J]. Science, 2016, 351(6271): 407-411.


[18] Yuda Wei, Yanhao Chen, et al. Prevention of Muscle Wasting by CRISPR/Cas9-mediated Disruption of Myostatin In Vivo. Molecular Therapy 24, 1889-1891.


[19] Liao H, Gu Y, Diaz A, et al. Use of the CRISPR/Cas9 system as an intracellular defense against HIV-1 infection in human cells[J]. Nature Communications, 2015. 


[20] Hart T, Chandrashekhar M, et al. High-Resolution CRISPR Screens Reveal Fitness Genes and Genotype-Specific Cancer Liabilities. Cell. 2015 Dec 3;163(6):1515-26.


[21] Sidik SM,Huet D, et al. A Genome-wide CRISPR Screen in Toxoplasma Identifies Essential Apicomplexan Genes. Cell 2016 Sep 8;166(6):1423-1435.


[22] Zachary Steinhart, Zvezdan Pavlovic, et al. Genome-wide CRISPR screens reveal a Wnt-FZD5 signaling circuit as a druggable vulnerability of RNF43-mutant pancreatic tumors. Nature Medicine (2016) doi:10.1038/nm.4219.


[23] A genome-wide CRISPR screen identifies a restricted set of HIV host dependency factors. Nature genetics.


[24] http://www.nature.com/news/gene-edited-crispr-mushroom-escapes-us-regulation-1.19754.


[25] Sebastian Soyk, Niels A Müller,et al. Variation in the flowering gene SELF PRUNING 5G promotes day-neutrality and early yield in tomato. Nature Genetics 49, 162–168 (2017).


[26] Yuming Lu, Jian-kang Zhu. Precise editing of a target base in the rice genome using a modified CRISPR/Cas9 system. Molecular Plant,2016.



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