J Pest Sci︱陈晓光等团队的研究揭示了媒介伊蚊抗性发生新机制，为杀虫剂抗性管理提供了筛选策略
撰文︱郭怡佳
责编︱王思珍，方以一
编辑︱方以一
白纹伊蚊（Aedes albopictus）是登革热等蚊媒传染病（mosquito-borne diseases）的重要传播媒介[1]，也是全球最具入侵性的蚊种[2]。媒介控制，特别是使用化学杀虫剂，是目前预防登革热的唯一有效途径。然而，杀虫剂的广泛和不当使用导致抗药性问题日益严重，尤其是对最常用的拟除虫菊酯类杀虫剂的抗药性，严重阻碍了登革热的防控[3, 4]。因此，确定白纹伊蚊种群对杀虫剂的抗药性水平对于病媒控制具有重要指导意义。了解白纹伊蚊抗药性产生和进化的分子机制，对研发精准敏感的抗药性检测分子方法至关重要。
目前公认的蚊虫对拟除虫菊酯杀虫剂（pyrethroid）的抗性机制主要包括影响杀虫剂结合亲和力的基因突变（target-site resistance，靶标抗性）和杀虫剂在达到靶标之前的代谢解毒作用（metabolic resistance，代谢抗性）。这些机制与杀虫剂抗药性的关联通常是基于现场研究的相关性分析，容易受到野外杀虫剂使用情况复杂、蚊虫种群的生活史和变化的环境条件等混杂因素的影响，验证这些特定机制和杀虫剂抗性之间的直接因果关系一直是一个挑战。科学家利用在非洲爪蟾卵母细胞成功表达的埃及伊蚊钠通道，为靶标基因突变导致拟除虫菊酯抗性提供了体外证据[5]；近期也有科学家通过CRISPR/Cas9技术，在果蝇、甜菜夜蛾和冈比亚按蚊中体内验证了靶标基因突变对抗药性的直接贡献[6-8]。由于缺乏体内实验和因果证据，伊蚊的抗药性机制仍然不清楚。
2022年8月22日，南方医科大学热带医学研究所陈晓光教授等团队在国际学术期刊Journal of Pest Science上在线发表了题为“CRISPR/Cas9 mediated F1534S substitution in the voltage gated sodium channel reveals its necessity and sufficiency for deltamethrin resistance in Aedes albopictus”的文章。该研究利用CRISPR/Cas9技术在白纹伊蚊个体中证明了VGSC基因F1534S突变对溴氰菊酯抗性产生的关键作用，并建立了高效分子检测方法在野外种群中进行了验证，为白纹伊蚊抗药性监测管理提供了理论依据和实践应用。
作者选择最常用的拟除虫菊酯杀虫剂（pyrethroid）的代表性药物溴氰菊酯（deltamethrin）对实验室敏感品系（Lab-S）进行筛选，成功建立了一株白纹伊蚊溴氰菊酯抗性品系（Lab-R）。在持续施压的条件下，抗性发展的规律呈现出先缓后快的趋势（图1a, b），提示白纹伊蚊抗药性出现的早期是媒介控制的关键。在实验室筛选条件下，白纹伊蚊溴氰菊酯抗性产生初期，作为杀虫剂靶标的电压门控钠离子通道（voltage-gated sodium channels, VGSC）基因F1534S突变（target-site resistance，靶标抗性）首先出现，I1532T突变和代谢解毒酶的参与（metabolic resistance，代谢抗性）随后出现（图1c, d）。作者推测在白纹伊蚊溴氰菊酯抗性产生的过程中可能是先由VGSC等位基因F1534S突变引起，使种群的抗性程度不断发展。F1534S突变的出现并在种群内部达到一定频率是溴氰菊酯抗性产生的可能标志，因此，作者初步选择白纹伊蚊VGSC基因F1534S突变作为种群对溴氰菊酯产生抗性的分子标志，接下来进行功能验证。
图1 白纹伊蚊对溴氰菊酯的抗性变化和抗性机制
（图源：Guo Y, et al., J PEST SCI, 2022）
从白纹伊蚊的敏感个体出发，作者利用CRISPR/Cas9技术成功构建了F1534S突变纯合品系（F1534S strain），该品系对溴氰菊酯杀虫剂具有高水平抗性（图2）；通过与敏感品系回交恢复该突变（S1534F strain），可恢复种群对溴氰菊酯杀虫剂的敏感性（图2）。正反交获得的杂合子后代的生测结果表明F1534S杂合突变也可导致溴氰菊酯高度抗性。从1534S突变品系获得的溴氰菊酯抗性为常染色体遗传，接近完全显性遗传。
图2 Cas9/gRNA介导的F1534S突变与白纹伊蚊相关品系的抗药性
（图源：Guo Y, et al., J PEST SCI, 2022）
通过白纹伊蚊VGSC基因F1534S突变对蛋白构象的影响预测和对接分析发现，突变前后的预测蛋白构象相似（图3a, b），但突变后的蛋白与溴氰菊酯分子结合力较低（图3c）。对几个相关品系的VGSC基因表达量进行检测，发现白纹伊蚊幼虫期的VGSC基因表达量都显著低于成蚊期（图3d），且溴氰菊酯抗性品系的表达量均低于敏感品系（图3e）。以上结果说明白纹伊蚊不仅通过钠离子通道位点的突变改变与杀虫剂的结合力，还可能通过改变VGSC基因的表达量来降低对杀虫剂的敏感性。
图3 F1534S突变引起的VGSC蛋白结构变化和表达量变化
（图源：Guo Y, et al., J PEST SCI, 2022）
进一步作者对收集的14个白纹伊蚊种群对溴氰菊酯的抗药性和VGSC基因1534位点进行检测。3个实验室敏感品系和1个野外敏感种群的VGSC基因1534位点均未检测到突变，而其余10个对溴氰菊酯抗性的野外种群均检测到F1534S突变（图4）。这些结果显示，检测到VGSC基因F1534S突变可以作为白纹伊蚊种群对溴氰菊酯产生抗性的分子依据之一。基于以上的结果，作者建立了白纹伊蚊VGSC基因F1534S突变的AS-PCR方法，以达到快速检测野外白纹伊蚊种群F1534S突变频率并评估溴氰菊酯抗性的目的。
图4 白纹伊蚊实验室品系和野外种群的溴氰菊酯抗性和1534位点突变
（图源：Guo Y, et al., J PEST SCI, 2022）
原文链接：https://doi.org/10.1007/s10340-022-01557-6
该研究由国家自然科学基金（81829004, 31830087），国家重点研发项目（2020YFC1200100）及美国NIH R01课题（AI136850）支持。
第一作者：郭怡佳（一排左八），通讯作者：陈晓光（一排左九）
（照片提供自：南方医科大学热带医学研究所）
陈晓光教授，南方医科大学热带医学研究所所长、二级教授、博士生导师；“新世纪百千万人才工程”国家级人选、国务院特殊津贴专家、南粤优秀教师、广东省特聘教授珠江学者、广东省高校教学名师、广东省医学领军人才、广东省应急管理专家、广东省丁颖科技奖获得者；中国动物学会寄生虫学专业委员会副理事长、中国动物学会原生动物学分会副理事长、中华医学会热带病与寄生虫学分会常委兼虫媒病学组组长、中华预防医学会媒介生物学及控制分会常委、中国昆虫学会医学昆虫专委会和昆虫基因组学专委会理事、国家级精品课程和双语示范课程《医学寄生虫学》主持人、广东省有害生物防制协会会长、广东省新发传染病防治重点实验室主任等。
主要从事媒介蚊虫及其传染病的防治研究。主持研究国内外重要课题10余项，包括美国NIH R01课题2项、国家重点研发项目1项（首席科学家）、国家自然科学基金重点类项目4项等。以第一完成人获得广东省科技进步一等奖1项、二等奖2项、军队科技进步二等奖1项、中华医学会科技进步三等奖1项、南粤科技创新优秀论文一等奖1项；获发明专利授权7件、实用新型专利权5件；发表学术论文200多篇，其中SCI收录100多篇，包括Science, PNAS, Lancet Infectious Disease，Emerging Infectious Disease等。【1】Autophagy︱张新军课题组揭示了RAB21在调控retromer介导的逆向回膜转运以及维持细胞能量稳态中的重要作用
【2】STTT︱刘洋团队揭示不同变种新冠病毒交叉中和及保护能力图谱
【3】Cell Death Dis︱王小川团队揭示去泛素化酶USP10参与毒性Aβ介导Tau聚集的调控机制
【4】Nat Commun︱叶克强团队发现TrkB激动剂前药-R13可抑制骨流失
【5】Redox Biol︱王显祥团队报道抗结肠炎潜在纳米药物：一种新型纳米酶PMNFs在治疗DSS诱导的小鼠结肠炎中的作用机制
【6】Adv Sci ︱陈润锋/许利刚团队提出软界面动态调控钙钛矿薄膜质量获得超过6200小时光稳定性反式太阳电池
【7】Autophagy︱杨倩课题组揭示转录因子TFEB入核调控新机制
【8】Cell Death Discov 综述︱刘晓丹团队总结坏死性凋亡对慢性阻塞性肺病气流受限的影响
参考文献（上下滑动阅读）
[1] Paupy C, Delatte H, Bagny L et al (2009) Aedes albopictus, an arbovirus vector: from the darkness to the light. Microbes Infect 11:1177–1185.
[2] Bonizzoni M, Gasperi G, Chen X, James AA (2013) The invasive mosquito species Aedes albopictus: current knowledge and future perspectives. Trends Parasitol 29:460–468.
[3] Su X, Guo Y, Deng J et al (2019) Fast emerging insecticide resistance in Aedes albopictus in Guangzhou, China: alarm to the dengue epidemic. PLoS Negl Trop Dis 13:e0007665.
[4] WHO (2012) Global strategy for dengue prevention and control 2012–2020. World Health Organization.
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[6] Douris V, Denecke S, Van Leeuwen T (2020) Using CRISPR/Cas9 genome modification to understand the genetic basis of insecticide resistance: Drosophila and beyond. Pestic Biochem Physiol 167:104595.
[7] Zuo Y, Wang H, Xu Y et al (2017) CRISPR/Cas9 mediated G4946E substitution in the ryanodine receptor of Spodoptera exigua confers high levels of resistance to diamide insecticides. Insect Biochem Mol Biol 89:79–85.
[8] Grigoraki L, Cowlishaw R, Nolan T et al (2021) CRISPR/Cas9 modified An. gambiae carrying kdr mutation L1014F functionally validate its contribution in insecticide resistance and combined effect with metabolic enzymes. PLoS Genet 17:e1009556.
本文完