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差异可变剪接软件哪家强?

生信阿拉丁 生信阿拉丁 2022-05-16

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01

摘要

可变剪接作为转录后修饰的重要环节,对细胞的活性和疾病的发生发展都有广泛的作用。尽管目前软件很多,但是软件间的比较却比较少。作者系统地比较了10款软件,利用了一致性(consistency)、可重复性(reproducibility)、精确度(precision)、召回率(recall)和错误发现率(false discovery rate)、报道的可变剪接基因的一致性(agreement upon reported differentially spliced genes)与功能富集分析一致性等方面来评价不同的可变剪接软件。

软件主要是三大类:

  • exon-base :DEXseq、edgeR、JunctionSeq、limma

  • isoform-base:cuffdiff2、diffSplice2

  • event-base:dSpliceType、MAJIQ、rMATS、SUPPA

结论

  • 所有exon-base的软件 要好于其他两个

  • 数据集和样品数对结果的影响更大



02

背景


  • 在人类中,90%-95%的多exonic基因存在可变剪接;不同的可变剪接也可以作为药物的biomarker或者target。

  • 可变剪接类型主要有五种:

    • SE:是高等生物中比较常见的事件,能占到40%;

    • A3SS:3'端选择不同的剪接位点,占18%左右;

    • A5SS:5‘端选择不同的剪接位点,占8%左右;

    • RI:内含子保留,比例大概为5%;

    • MXE:外显子互斥的可变剪接。

  • 可变剪接的检测策略

    • isoform-base : 先构建全长转录本和定量,再来做差异分析

    • count-base:将基因用单个统计单元来表示,并且进行差异分析

      • exon-base :利用exon来作为统计单元

      • event-base :利用junction region作为统计单元

  • 文章使用的参比数据

    • human prostate cancer:人类的前列腺癌的数据,28个样品;

    • human hepatocellular carcinoma :肝癌数据,100个样品;

    • MVS, mouse validated data,敲除小鼠的转录本,包含验证过的28个基因;

    • HVS, human validated data,32个验证过的基因。


03

材料方法


PART

1

各个软件说明


isoform base

  • cufflinks:首先构建overlap graphs,之后估计转录本丰度,最后检查差异基因和isoform;

  • DiffSplice:基于图论的方法来进行分析,首先基于比对构建转录本,然后对不同的path来定量丰度,最终鉴定出可变剪接体。


count base

  • exon-base:将序列分配到不同的特征上,例如exon或者junction;这个只能分析已知的特征,而不能推断出新的可变剪接事件;

  • isoform-base:通过计算每个事件(PSI)值中的拼接百分比来量化剪接事件,PSI表示该值测量从包含该事件特定形式的基因中表达的mRNA的分数。


PART

2

数据来源



4个下载的数据

软件的详细信息

PART

3

评估方法



  • 针对PCa和HCa数据集

    • 一致性:使用gene层面上的结果,来评估一致性。

    • precision :部分样品与全部样品的交集 比上 部分样品检测的结果

    • recall:部分样品与全部样品的交集 比上 所有样品检测的结果

    • FDR:从正常样品中抽样产生模拟的两个组进行比较,得到的基因作为FP;FDR=FP/(相同样品数下的差异数)。

  • 针对MVS和HVS数据集

    • 检测率:对28和32个qPCR验证的基因进行比较;

    • 不同深度:使用HVS,采样到20-100M,进行分析。评估precision和recall。

  • 功能分析

    • 使用top500 genes,利用topGO进行功能分析。


04

结果




01


检测数和一致性

  • 检测数方面

    • 在PCa和HCa中,发现不同的工具检测出来的数据变化很大:

      • PCa中cuffdiff为0 , edgeR为4506个;HCa中SUPPA2为0,而limma为14313个

    • cuffdiff2检测结果最小;SUPPA也检测不多;

    • exon-base的方法变动随着样品增加变化大;

    • 在有些软件中,检测的差异数随着样品增加而增加,有些软件却减少


  • precision方面

    • 随着样品数不一样,整体变动大

    • exon-base的方法的precision高于其他两种


  • FDR方面

    • 使用normal样品作为两组来进行DS检测。各个软件差异蛮大,有些FDR还很大




02


交并集比较

  • 相关性分析:取每个工具前500个基因进行相关性分析,发现相关性很差。

  • 不同的软件报道的事件也有偏差。




03


qPCR结果的比较

使用真集来验证precision和recall。惨不忍睹。




04


功能分析

作者做了功能分析,想从功能分析找补回来,看看功能是不是一样。




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资源消耗

从不同的样品数进行了评估。




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测序量的作用

  • 大概在40-50M的时候,发现量就稳定了




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DS基因与DEG基因的关系

做了两个列表的交集,发现关系不大。


总结

  • 文章亮点

    • 选择了10个软件,代表不同的算法

    • 使用了较大的数据样品,数据量也够,也有qPCR结果

  • 下一步方向

    • 没有全面的ground truth

  • 结论

    • exon-base和两款event-base的方法表现好

    • 建议多用几款软件



参考文献:
Mehmood A, Laiho A, Venäläinen MS, McGlinchey AJ, Wang N, Elo LL. Systematic evaluation of differential splicing tools for RNA-seq studies. Brief Bioinform. 2020 Dec 1;21(6):2052-2065. doi: 10.1093/bib/bbz126. PMID: 31802105; PMCID: PMC7711265.



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作者:  童  蒙

编辑:amethyst



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