【人物与科研】南方科技大学李斌课题组Adv. Mater.:利用脂样纳米自组装体递送新冠病毒ACE2诱饵受体mRNA
导语
近日,南方科技大学第一附属医院深圳市人民医院李斌课题组独辟蹊径,以新冠病毒进入细胞的ACE2受体序列为出发点,通过体外转录得到具有高亲和力的ACE2诱饵受体mRNA。随后课题组利用一种自主研发的新型双组份脂样纳米自组装体(Lipid-Like Nanoassemblies, LLNs)包裹工程化mRNA形成纳米级自组装体,首次实现ACE2诱饵受体mRNA的分泌型表达,且中和活性与中和抗体相当,为控制新冠疫情提供了新的干预策略。该研究成果以“Secreted Expression of mRNA-Encoded Truncated ACE2 Variants for SARS-CoV-2 via Lipid-Like Nanoassemblies”为题,在线发表于Advanced Materials(DOI: 10.1002/adma.202101707)。
李斌课题组简介
李斌博士,南方科技大学临床副教授,暨南大学第二临床医学院副研究员;2014年毕业于中国医学科学院&北京协和医学院,师从甄永苏院士;2014-2018年在美国俄亥俄州立大学从事博士后研究;2019年回国组建纳米药物及基因编辑实验室。课题组成立以来主要从事核酸药物递送系统、基因编辑技术及抗肿瘤药物的研发。近年来,李斌博士以第一作者或通讯作者身份在Nature Biomedical Engineering, Nature Protocols, Advanced Materials, Nano Letters, Cell Research, Cell Reports等杂志发表SCI论文。授权美国发明专利1项、申请国际发明专利3项、中国发明专利5项。先后获得深圳市人民医院特聘高端医学人才(2019)、深圳市海外高层次人才(2019)、深圳市优秀科技创新人才(深圳市优秀青年基金)(2021)等荣誉。近两年主持国家自然科学基金面上项目、深圳市优秀青年基金项目、深圳市面上项目、广东省高水平医院登峰计划人才引进启动项目各一项,资助金额超过1000万元。课题组微信公众号:信使社区。欢迎对医药学、材料学、遗传学等方面感兴趣的研究生和博士后加入本课题组。
前沿科研成果
利用脂样纳米自组装体递送新冠病毒ACE2诱饵受体mRNA
李斌博士在核酸化学和mRNA递送领域具有多年的研发经验,目前已开发出多种不同类型的mRNA递送材料,用于递送功能性mRNA、基因编辑酶mRNA等。用于递送mRNA的传统脂质纳米粒(Lipid Nanoparticles, LNPs)通常由四种不同类型的脂质分子组成,其中聚乙二醇化脂质分子可能会引起过敏反应。为了简化传统LNPs制剂配方、提高制剂的批次稳定性,李斌课题组首次开发出不含聚乙二醇化脂质分子的二元脂样纳米自组装体(Lipid-Like Nanoassemblies, LLNs),并用于递送新冠病毒ACE2诱饵受体mRNA,以达到中和新冠病毒的目的(图1)。
图1. 脂样纳米自组装体(Lipid-Like Nanoassemblies, LLNs)介导外源性ACE2诱饵受体mRNA的胞内表达及潜在用于中和新冠病毒示意图(来源:Adv. Mater.)
首先,课题组合成了一系列含有不同侧链的对称芳香类脂样化合物库,初筛发现含有C18不饱和侧链的Y字型脂样分子tB-UC18显示出最优的递送效率。随后,课题组采取逐级优化策略确定了双组份纳米制剂的最佳配方参数。先导化合物tB-UC18在不同配方的制剂中表现出不同的理化性质:随着氮磷比不断增加,制剂的包封率先变大后减小、粒径逐渐趋于不稳定、电位由负电变为正电。在细胞水平,最优纳米制剂tB-UC18 LLNs递送mRNA的效率为商业化转染试剂Lipo2K的两倍左右(图2)。最为重要的是,在包载相同剂量mRNA的情况下,课题组构建的双组分LLNs的用量远远低于传统LNPs(17%甚至更低),这为后续体内实验减少药物的用量奠定了良好的基础。
图2. LLNs的制备与优化(来源:Adv. Mater.)
动态光散射仪以及透射电镜结果表明,tB-UC18 LLNs的粒径为200~300 nm,表面电位为-25 mV左右。tB-UC18 LLNs在酸性环境下(pH=5.8),粒径增加发生溶胀且电位反转,该性质有利于内体逃逸。细胞毒性实验以及溶血实验均证明tB-UC18 LLNs具有良好的生物相容性。琼脂糖凝胶电泳实验表明,负载于tB-UC18 LLNs的mRNA相比于游离的mRNA,呈现明显的抗RNA酶和抗血清稳定性(图3)。
图3. tB-UC18 LLNs的理化性质表征(来源:Adv. Mater.)
为了进一步验证tB-UC18 LLNs的递送效率,作者利用两种不同类型的mRNA在两种不同类型的细胞中对纳米制剂进行了考察。结果表明无论是蛋白活性测定、原位染色还是荧光成像,tB-UC18 LLNs对mRNA的递送效率均呈现时间和剂量依赖性。另外,作者还考察了纳米制剂的摄取机制,发现tB-UC18 LLNs主要由网格蛋白及巨胞饮途经介导(图4)。
图4. tB-UC18 LLNs胞内递送外源性mRNA(来源:Adv. Mater.)
接下来,作者进一步探究了tB-UC18 LLNs的给药方案。不同给药途经给药4小时后的活体成像结果显示,肌肉及皮下注射的负载于tB-UC18 LLNs的mRNA仅在注射部位表达,而静脉给药则导致95%以上的蛋白在脾脏表达,且主要集中在脾脏的巨噬细胞和树突状细胞。体内生化指标、组织切片等安全性评估结果均未发现异常改变(图5)。最为重要的是,该mRNA递送制剂是目前为止所报道的脾脏靶向特异性最高的纳米制剂。
图5. tB-UC18 LLNs在小鼠体内的递送mRNA(来源:Adv. Mater.)
最后,作者基于新冠病毒-ACE2受体的晶体结构,通过工程化改造设计出具有高亲和活性的ACE2诱饵受体mRNA,并通过检测细胞上清液对负载ACE2诱饵受体mRNA的tB-UC18 LLNs的分泌性表达情况进行了概念性验证。酶联反应及假病毒替代实验表明,tB-UC18 LLNs不仅可以介导诱饵受体mRNA的分泌型表达,而且所表达的诱饵受体可以阻止新冠病毒与ACE2受体结合,从而发挥类似中和抗体的功能活性(图6)。
图6. 工程化ACE2诱饵受体mRNA的设计、表达及活性测定(来源:Adv. Mater.)
总结:作者通过逐级优化策略,自主研发了一种不含聚乙二醇化脂质分子的二元脂样纳米自组装体(Lipid-Like Nanoassemblies, LLNs)用于递送工程化改造的新冠病毒ACE2诱饵受体mRNA,其分泌表达的诱饵受体具有中和病毒的功能活性。本研究所报道的双组份脂样纳米自组装体相对于传统方法获得的四组份脂质纳米粒(Lipid Nanoparticles, LNPs),配方简单不含PEG化脂质分子且用量低,同时兼具优异的递送效率、抗酶稳定性、组织特异性等优点,有望应用于mRNA疫苗、蛋白替代疗法等领域。
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