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生物小白的入门必修课——基础配液

The following article is from 轲小基的魔药教室 Author 柯基不会飞


【本文提要】
    细胞用液体的配液前准备
    细胞培养基的配液
    常见其他液体的配方:D-Hanks、PBS、多聚甲醛、胰酶、含钙镁的Hanks、棕榈酸
    酸缸的配制

    据我了解,一般人对做实验的认知,常停留在“烧钱”这一表面现象上。因此,很多新入组的、从未做过科研的小朋友们,常常也会怀有自己课题组十分富有的错误认知。事实上,极少有课题组能够做到经费自由。
    既然不是每一个课题组都有足够充足的经费来购买成品试剂,那么,配液就成了每个新同学进入实验室后需要学会的第一件事情了。
    本次教程将以培养基和细胞用平衡盐溶液为主要示例,概述配液的基本过程。文末并将附上其他常用液体配方。

【细胞用液体的配液前准备】
    第一天,耗时约2~3h
    我们所有给细胞使用的液体,都需要使用洁净级别最高的容器来盛放。因此,所有的玻璃器皿,都需要经过泡酸的过程。
    将所用的玻璃瓶超声清洗30min(超声用水添加少量洗涤液,洗涤液不宜过多,以免超声产生大量气泡)。超声清洗完成后,流动自来水洗净洗涤液。继而超纯水简单涮洗一遍后,90℃烘箱烘干(约30min)。
    烘干完成后,温度较高,谨防烫伤。取出玻璃瓶,室温降温。待玻璃瓶降温至室温后,泡酸过夜,或泡酸8小时以上。
    此处强调,泡酸与捞酸过程均为危险操作,务必做好防护!
    第二天,耗时约7~8h
    上午八点,选择合适的滤器(如本课题组,为一巨大的金属滤器)、1L容量瓶1L烧杯400ml烧杯,超声清洗30min,流动水冲洗干净(至少10遍,彻底洗去),超纯水再冲洗。
    泡酸容器取出,超声上述器皿的同时,可清洗泡酸器皿。使用流动自来水反复冲洗20遍,去除残留的酸;超纯水冲洗8遍,确保烘干后不留水垢。
    清洗完成后,将玻璃容器移入烘干机烘干80℃,烘干30~60min。
    继续完成滤器、烧杯等的清洗。待超声完成后,自来水冲洗20遍,超纯水冲洗8遍。烘干。烘干后观察,各器皿锃光瓦亮,没有水垢。
    所有器皿烘干后,准备高压滤器跟玻璃瓶。玻璃瓶瓶口拧松半圈(高压灭菌时,避免瓶内外压力差过大而发生爆裂),牛皮纸包裹瓶口。所有待高压物品用包布包裹。
    高压锅灭菌。通常灭菌程序为121℃,高压30min。使用高压锅前务必经过培训。所有的高压容器均需要谨慎对待。高压灭菌锅升温至121℃后,方才开始30min的倒计时,加上高压结束后的降温降压过程,共耗时约90~120min。高压灭菌结束后,及时取出物品并烘干。检查仪器并断开电源。

【细胞培养基的配液】
    按照前述方案准备好相应物品。
    以Gibco粉末培养基为例:
    于1L烧杯中加入三蒸水600~800ml(不能超过800ml)。自4℃冰箱取培养基粉末,加入烧杯,并用少量三蒸水冲洗袋内残留粉末。依据袋子上说明书,加入所需NaHCO3量(或参照本课题组经验数据,DMEM加入3.7g NaHCO3、1640加入2.2g NaHCO3)。加入双抗(使工作浓度达到100U/ml)。加入转子搅拌,烧杯封上保鲜膜,继续搅拌混匀。
    搅拌一定时长后,将液体补至800ml,定PH至7.2~7.4(7.2为佳);使用移液枪转移HCl & Na(OH)2调pH;定PH后,液体移至1L容量瓶定容;转子继续搅拌一定时间;
    过滤除菌。

【常见其他液体的配方】 
    1.D-Hanks:
    精确称量氯化钠8.00g、氯化钾0.40g、七水合磷酸氢二钠0.09g、磷酸二氢钾0.06g、碳酸氢纳0.35g以及D葡萄糖1.00g;
    将上述化学物置入1000mL烧杯中,先加入800mL去离子水并放置于磁力搅拌器上进行搅拌溶解;检测D-Hanks液的酸碱度,并精确调整pH值至7.2,定容至1000mL。
    定性滤纸过滤,并分装于储液瓶中,高温高压灭菌后,置于4℃冰箱过夜,观察确认无结晶析出后使用。

     2.PBS:
    精确称量氯化钠8.00g、氯化钾0.20g、磷酸氢二钠1.44g和磷酸二氢钾0.24g;
    将上述化学物置入1000mL烧杯中,先加入800mL去离子水并放置于磁力搅拌器上进行搅拌溶解;检测D-Hanks液的酸碱度,并精确调整pH值至7.2,定容至1000mL。
    定性滤纸过滤,并分装于储液瓶中,高温高压灭菌后,置于4℃冰箱过夜,观察确认无结晶析出后使用。
    PBS与D-Hanks的一个重要区别,即PBS不含糖。

    3. 3.7%多聚甲醛:
    提前超声清洗小烧杯、100ml容量瓶、转子。
    精确称量3.70g多聚甲醛粉末,加入60ml PBS溶液。
    磁力搅拌器搅拌,期间加入氢氧化钠助溶。(需要大量氢氧化钠,加入后可明显看到悬浊液变澄清)。调PH至7.2~7.4。常规滤纸过滤,分装,4℃保存。
 
    4.胰酶
    无菌D-Hanks溶液,至少100ml,提前4℃预冷。(此处强调是D-Hanks,因为D-Hanks较PBS而言更为粘稠,配出来的胰酶效果更佳。此处还要强调尽管之后还要过滤,但配液使用的液体仍然需要无菌,否则之后过滤的液体仍大概率污染,小编也不知道为什么。)
    每100ml,添加胰酶粉末0.25g,EDTA0.02g。调PH=8.0~8.1。过滤后即可使用。
 
    5.含钙、镁的Hanks

    6.棕榈酸(10mM)的配液:
    A液配制(100mM NaOH 10ml):称取0.04gNaOH溶于10ml D-Hanks中。
    B液配制(100mM棕榈酸):称取0.0256g×1.1=0.02816g棕榈酸粉末,倒入EP尖管,加入1×1.1ml A液,使用较薄的海绵飘子,80度水浴加热(约20min,视环境温度而异),直至液体澄清。
    C液配置(8%无脂肪酸BSA溶液):称取0.4g BSA溶于D-Hanks液2.5~3ml中,配制两管,55度水浴震荡5min(可使用60度孵箱水浴,反复震荡,不用担心起过多气泡)。再分别取0.5ml B液加入其中,55度水浴震荡5min(方法同前)。
    调PH:用D-Hanks溶液配置的NaOH溶液,使用PH试纸将PH调至7.2~7.4。注意,记住调PH时用的NaOH液体量V,D-Hanks补足(1ml-V)。此时,棕榈酸终浓度为10mM。
    灭菌:于超净台内过滤,分装于EP管,-20保存,避免反复冻融。
    PS:棕榈酸配液一般不用HCl调PH,且使用PH试纸调PH,因为HCl会使棕榈酸不溶,且因配液量较小,PH计电极伸不进去。

【酸缸的配制】
    材料:重铬酸钾6 000 g、浓硫酸10000 mL、蒸馏水50 000 mL、石棉网及支架、玻璃棒、酒精灯、手套围裙白大褂
    步骤:
    (1) 将重铬酸钾放人大烧杯中,加入蒸馏水放在石棉网上加热至沸腾并搅拌,使重铬酸钾充分溶解。
    (2) 将重铬酸钾液倒入酸缸中,然后缓慢加入硫酸并用一长玻璃棒不断搅拌,充分混合溶解。操作时务必注意安全,穿戴好耐酸手套和围裙,防止洗液溅到皮肤和衣物上。万一不慎溅到皮肤上应立即用大量清水冲洗,及时就医。

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利益声明:
    本教程未涉及任何商业推广,所用试剂、耗材可根据各课题组需求酌情更换。



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