Cancer Cell︱四川大学华西医院石虎兵/马学磊团队发现循环肿瘤细胞新的免疫检查点
封面故事:封面设计灵感来源于中国古典四大名著之一的《西游记》。当孙悟空(NKs)识破美丽的小女孩是由一心想吃唐僧肉的白骨精(CTCs)所变,并要尝试将其杀死时,白骨精会通过假装楚楚可怜唤起唐僧(血小板)的悲悯之心来保护她,猪八戒(HLA-E)也被唐僧误导,以致最后阻碍了对白骨精的制服(图1)。
图1 Cancer Cell封面文章
肿瘤细胞的转移扩散是癌症相关死亡的主要原因。从原发灶肿瘤脱落的循环肿瘤细胞(Circulating tumor cells, CTCs)被认为是肿瘤远端转移的“种子”[1-3]。阐明肿瘤细胞转移扩散的潜在机制,开发针对肿瘤转移“种子”细胞的新型治疗策略对抑制肿瘤转移具有重要意义。近年来,随着人们对肿瘤免疫逃逸的认知,免疫检查点阻断已经彻底改变了多种癌症的治疗模式[4-6]。目前,实体肿瘤原发或转移灶肿瘤微环境中肿瘤细胞与不同类型的免疫细胞之间的免疫检查点分子已经得到了广泛的研究。由于血液循环是肿瘤细胞从原发灶向远端转移的主要途径[7-9],研究CTCs与血液中免疫细胞之间的相互作用可能提供一种通过激活宿主免疫系统来阻断转移的策略。然而,目前关于CTCs在血液中如何逃脱宿主免疫监视的机制尚不清楚,也缺乏有效的抑制CTCs转移扩散的治疗方案。
2023年1月26日,四川大学华西医院生物治疗国家重点实验室石虎兵教授团队联合四川大学华西医院马学磊副教授在Cancer Cell发表封面研究论文“Immune checkpoint HLA-E:CD94-NKG2A mediates evasion of circulating tumor cells from NK cell surveillance”,发现了CTCs与NK细胞间新的免疫检查点分子对HLA-E:CD94-NKG2A,阐明了CTCs逃避宿主免疫监视的新机制,进而提出靶向免疫检查点HLA-E:CD94-NKG2A抑制肿瘤转移的治疗策略。(拓展阅读:石虎兵课题组相关研究进展,详见“岚翰生命科学”报道(点击阅读):Cell Rep Med︱石虎兵团队发现三阴性乳腺癌MEK靶向治疗的耐药机制)
为了研究CTCs的转移机制,团队以胰腺导管癌(pancreatic ductal adenocarcinoma, PDAC)肝转移为模型,利用单细胞转录组测序技术刻画了PDAC原发灶肿瘤、CTCs和肝转移灶肿瘤微环境的转录普特征,基于CellPhoneDB分析了原发灶肿瘤细胞、CTCs和转移灶肿瘤细胞与免疫细胞间的相互作用,鉴定出CTCs与NK细胞间特异性的免疫检查点分子对HLA-E:CD94-NKG2A。并通过体内外实验,证明了利用anti-NKG2A的阻断抗体或者shHLA-E阻断该免疫检查点分子对的结合可有效的抑制肿瘤转移,表明HLA-E:CD94-NKG2A是CTCs与NK细胞间的一个新型的免疫检查点分子对(图2)。
图2 文章整体设计思路
(图源:Liu X, et al ., Cancer Cell. 2023)
首先,基于CellPhoneDB数据库,研究者们对肿瘤细胞与不同类型免疫细胞之间的相互作用进行探索。结果发现,在原发或转移病灶的肿瘤微环境中,肿瘤细胞与多种类型免疫细胞发生相互作用,如CD8+T细胞、巨噬细胞、NK细胞等。而CTCs主要通过其表面的HLA-E分子与NK细胞上的CD94-NKG2A分子发生特异性的相互作用。
值得注意的是,无论是原发或转移病灶肿瘤微环境中还是血液环境中,大多数NK细胞都表达CD94-NKG2A,但HLA-E在CTCs上的表达水平要远高于实体病灶中的肿瘤细胞(图3)。
图3 鉴定出CTCs特异的免疫检查点HLA-E: CD94-NKG2A
(图源:Liu X, et al ., Cancer Cell. 2023)
接下来,研究者们利用体外实验和体内动物实验验证表明,使用抗NKG2A抗体治疗或使用遗传学手段敲低HLA-E的表达来阻断CTCs和NK细胞的结合和互作能够显著抑制PDAC肿瘤转移,并显著提高发生肺转移的PDAC小鼠在接种肿瘤后第27天的总生存率(图4)。
另外,阻断HLA-E:CD94-NKG2A之间的互作,其抗肿瘤效果仅局限于在血液循环中流动的CTCs,那些已经成功转移阵地、定植在新器官的肿瘤细胞不受影响。
图4 阻断免疫检查点HLA-E:CD94-NKG2A抑制小鼠肺转移的形成
(图源:Liu X, et al ., Cancer Cell. 2023)
进一步的分子机制研究发现,血小板来源RGS18通过AKT-GSK3β-CREB信号通路驱动CTCs中HLA-E的表达上调。通常认为,血小板通过黏附在CTC表面形成物理屏障,保护CTCs抵御免疫毒性细胞的攻击。有趣的是,该研究发现CTCs可以内吞血小板,并获得RGS18基因,从而帮助CTCs逃避NK细胞的免疫监视(图5)。这一发现颠覆了以往人们认为血小板黏附在CTC表面保护CTCs的认知[10-12],为研究血小板促进肿瘤转移提供了新的思路。
图5 血小板来源的RGS18通过AKT-GSK3β-CREB信号通路轴促进HLA-E的表达并介导CTCs逃避NK细胞免疫监视
(图源:Liu X, et al ., Cancer Cell. 2023)
四川大学华西医院刘小伟助理研究员、四川大学生物治疗国家重点实验室博士研究生宋金恩、刘馨雨和四川大学华西医院张浩副教授为文章的共同第一作者,四川大学生物治疗国家重点实验室石虎兵教授和四川大学华西医院生物治疗科马学磊副教授为通讯作者。
第一作者:刘小伟(左);通讯作者:马学磊(中),石虎兵(右)
(照片提供自:马学磊&石虎兵团队)
石虎兵,四川大学华西医院生物治疗国家重点实验室教授,博士生导师,国家“十三五”重点研发计划“精准医学研究”项目负责人,国家高层次青年人才。主要通过多维组学技术,从事肿瘤MAPK通路分子靶向和PD-1-PD-L1免疫检测点抑制剂的精准个体化治疗机理研究。研究期间共发表学术论文50余篇,影响因子超过1000,被引用9000余次,以第一作者或通讯作者(含共同)身份在Nature、Cell、Cancer Discovery(3篇)、Cancer Cell、Signal Transduction and Targeted Therapy、Nature Biomedical Engineering、Nature Communications、Blood(封面文章)等著名期刊发表论文20余篇。本实验室欢迎有意攻读硕士研究生、直博生、推荐免试博士研究生的优秀学子加入。申请者请将详细的个人简历,发送至shihb@scu.edu.cn,来信请在标题中注明“申请研究生”。具体信息详见:http://shilab.cn/
马学磊,副教授,博士生导师,华西医院生物治疗科副主任,四川省学术和技术后备人才,四川省医促会人工智能与肿瘤分会主委,肿瘤生物治疗分会常委。Clinical Medicine Insights: Oncology副主编;Oral Oncology编委。专攻于肿瘤转录组学和生物信息研究,及人工智能识别技术的医疗应用,一作或通讯发表160余篇,发表在如Cancer Cell,STTT,Bioactive Materials ,Carbohydrate Polymers ,advanced science ,Seminars in cancer biology等。引用次数6000余次,论著NCCN等国际顶尖指南引用10余次。欢迎优秀学子加入(临床和基础均招收),招生专用邮箱mxlmax@163.com。
欢迎加入岚翰生命科学群:文献学习2
【3】肿瘤免疫与新型细胞死亡课题设计及生信分析研讨会( 2023年2月25-26日,腾讯在线会议)【4】全国循证医学Meta分析与网状Meta研讨会(2023年3月4-5日,腾讯在线会议)【5】多组学联合网络药理学及分子对接与实验验证研讨会(2023年2月25-26日,腾讯在线会议)【6】高分SCI文章与标书作图(暨AI软件作图)研讨会(2023年2月25-26日,腾讯在线会议)(延期至:3月24-26日)欢迎加入“岚翰生命科学” ”岚翰生命科学“ 诚聘副主编/编辑/运营岗位 (在线办公)
参考文献(上下滑动阅读)
1. Mohme, M., Riethdorf, S., and Pantel, K. (2017). Circulating and disseminated tumour cells - mechanisms of immune surveillance and escape. Nature reviews. Clinical oncology 14, 155-167. 10.1038/nrclinonc.2016.144.
2. Yu, M. (2019). Metastasis Stemming from Circulating Tumor Cell Clusters. Trends in cell biology 29, 275-276. 10.1016/j.tcb.2019.02.001.
3. Deng, Z., Wu, S., Wang, Y., and Shi, D. (2022). Circulating tumor cell isolation for cancer diagnosis and prognosis. EBioMedicine 83, 104237. 10.1016/j.ebiom.2022.104237.
4. Tang, J., Yu, J.X., Hubbard-Lucey, V.M., Neftelinov, S.T., Hodge, J.P., and Lin, Y. (2018). Trial watch: The clinical trial landscape for PD1/PDL1 immune checkpoint inhibitors. Nature reviews. Drug discovery 17, 854-855. 10.1038/nrd.2018.210.
5. Sanmamed, M.F., and Chen, L. (2018). A Paradigm Shift in Cancer Immunotherapy: From Enhancement to Normalization. Cell 175, 313-326. 10.1016/j.cell.2018.09.035.
6. Twomey, J.D., and Zhang, B. (2021). Cancer Immunotherapy Update: FDA-Approved Checkpoint Inhibitors and Companion Diagnostics. The AAPS journal 23, 39. 10.1208/s12248-021-00574-0.
7. Lambert, A.W., Pattabiraman, D.R., and Weinberg, R.A. (2017). Emerging Biological Principles of Metastasis. Cell 168, 670-691. 10.1016/j.cell.2016.11.037.
8. Plaks, V., Koopman, C.D., and Werb, Z. (2013). Cancer. Circulating tumor cells. Science (New York, N.Y.) 341, 1186-1188. 10.1126/science.1235226.
9. Ganesh, K., and Massagué, J. (2021). Targeting metastatic cancer. Nature medicine 27, 34-44. 10.1038/s41591-020-01195-4.
10. Ward, M.P., L, E.K., L, A.N., Mohamed, B.M., Kelly, T., Bates, M., Clarke, A., Brady, N., Martin, C.M., Brooks, R.D., et al. (2021). Platelets, immune cells and the coagulation cascade; friend or foe of the circulating tumour cell? Molecular cancer 20, 59. 10.1186/s12943-021-01347-1.
11. Gay, L.J., and Felding-Habermann, B. (2011). Contribution of platelets to tumour metastasis. Nature reviews. Cancer 11, 123-134. 10.1038/nrc3004.
12. Labelle, M., and Hynes, R.O. (2012). The initial hours of metastasis: the importance of cooperative host-tumor cell interactions during hematogenous dissemination. Cancer discovery 2, 1091-1099. 10.1158/2159-8290.Cd-12-0329.