Mol Cell:mRNA的选择性翻译受RNA甲基化(m6A)调控 | 翻译组
本文是当期Molecular Cell的封面文章
文章信息
论文标题:N6-Methyladenosine Guides mRNA Alternative Translation during Integrated Stress Response
发表日期:2018年02月
发表杂志:Molecular Cell
影响因子:14.248
研究机构:康奈尔大学等
研究技术:Ribo-Seq,QTI-Seq,m6A-seq,SILAC,RNA-Seq等
亮点发现
* ATF4重新翻译起始需要m6A去甲基酶ALKBH5参与
* ATF4重新翻译起始对mRNA的m6A水平敏感
* 全局的选择性翻译受5’UTR的m6A水平调控
* 肝脏特异的FTO转基因小鼠的翻译起始因m6A水平改变而发生变化
文章摘要
转录激活子4(Activating Transcription Factor 4,ATF4)是一种普遍的胁迫反应响应基因,同时也是综合应激反应(Integrated Stress Response,ISR)途径中的重要响应器,在由缺氧、氨基酸缺乏、氧化应激和内质网应激等应激信号诱导的反应中发挥重要作用。ISR通过eIF2α(一种真核起始因子)来促进细胞适应应激条件。在ISR中,应激相关mRNA的选择性翻译通常依赖于选择性机制,比如遗漏扫描(Leaky scanning)或重新翻译起始(Reinitiation),但其潜在机制仍不完全清楚。本文发现,为应答氨基酸饥饿,ATF4的重新翻译起始不仅受eIF2α信号通路控制,而且还受到RNA甲基化(m6A)的调控。在敲除去甲基化酶ALKBH5,ATF4重新翻译起始被抑制时,敲低m6A甲基转移酶(METTL3或METTL14)会促进ATF4翻译。进一步实验证实是5’UTR的m6A控制核糖体扫描和随后发生的起始密码子选择。起始核糖体的全谱分析揭示动态的mRNA甲基化水平会引起广泛的选择性翻译事件。与此一致的是,Fto(另一种去甲基化酶)转基因小鼠表现出增强的ATF4表达,再次突显m6A在ISR翻译调控中的关键作用。
研究发现
ATF4翻译不只受到eIF2α磷酸化调控
图1 饥饿诱导的ATF4重新翻译起始伴有uORF2的持续翻译
ATF4的成熟转录本在5’UTR中含有两个uORF:一个靠近5’末端(uORF1),另一个与CDS重叠(uORF2),但在不同的阅读框中(图1A上方)。核糖体会以Leaky scanning的方式通过uORF1(因其较短)迁移到uORF2。在正常生长条件下,uORF2的起始密码子处容易发生重新翻译起始,从而抑制ATF4翻译。既有观点认为,在ISR时,由于eIF2α磷酸化导致可用的三元配合物(TC)较少,迁移的核糖体扫描通过uORF2并开始翻译下游CDS。即认为ATF4合成上调是uORF2翻译减少的直接结果。作者采用QTI-seq(定量翻译起始测序)和Ribo-seq对此判断进行了实验验证。在营养丰富的条件下,QTI-seq显示uORF1和uORF2上有清晰的TIS(Translation Initiation Site)峰,但在ATF4的CDS上没有(图1A左)。正如预期的那样,采用Ribo-seq在CDS上只显示处于背景水平的核糖体密度,而在uORF2上显示出相当多的印迹。而在氨基酸饥饿处理时,CDS中出现大量印迹,这与ATF4 的翻译上调是一致的(图1A中)。令人惊讶的是,uORF2也表现出增加的read密度,但与uORF2相关的上游TIS(uTIS)峰却减少了。这种不一致的现象也出现在HEK293细胞中。
由于uORF2与ATF4的CDS重叠,氨基酸饥饿时增加的uORF2 read密度可能被高估了。通过构建萤火虫荧光素酶 (Fluc) 报告基因实验,直接检测有或无氨基酸饥饿的细胞中重叠 的ORF的翻译状态(图1B)。与内源性ATF4类似,氨基酸饥饿触发了ATF4-Fluc的翻译。而uORF2-Fluc的翻译在这些饥饿细胞中没有显示出任何相应的减少。因此,饥饿诱导的 ATF4合成似乎不是uORF2翻译减少的直接后果。ATF4的重新翻译起始很可能依赖于比以前认为的更复杂的机制。
ATF4重新翻译起始需要80S核糖体和ALKBH5
图 2 ATF4翻译的定量蛋白质组分析
为探讨体内ATF4重新翻译起始的模式,作者采用SILAC蛋白质组定量技术,测量了氨基酸饥饿前后与ATF4 mRNA结合的核糖体亚基的相对比例(图2A、B)。实验结果支持 ATF4重新翻译起始需要终止后的80S核糖体。
SILAC数据还揭示出许多与ATF4 mRNA关联的RBP蛋白(图2C)。令人意外的是,观察到ALKBH5量的增加,这是众所周知的m6A去甲基化酶。接着用免疫印迹实验证实了ALKBH5与ATF4 mRNA的关联性(图2D)。为解释ALKBH5是直接与ATF4 mRNA结合还是通过蛋白复合物形成间接结合,又用4-硫代尿苷(s4U)标记的 RNA与细胞内源蛋白进行零距离交联,证实ATF4 mRNA可以将ALKBH5拉下来(图2E)。这表明mRNA的m6A修饰在饥饿诱导的ATF4翻译中可能有潜在作用。
差异的mRNA甲基化会影响ATF4翻译
图3 mRNA甲基化影响ATF4翻译
为研究m6A去甲基化酶是否在ATF4翻译中发挥作用,作者使用慢病毒短发夹RNA(shRNA) 敲低MEF细胞中的ALKBH5。结果在氨基酸饥饿时,缺乏ALKBH5的细胞中ATF4合成显著减少(图3A)。此现象不符合既有的eIF2α信号通路调控的观点,因为敲低ALKBH5对eIF2α磷酸化几乎无影响。那是否去甲基化酶都会产生类似的影响,对另一个去甲基化酶FTO的敲低实验也得到了的一致的结果(图3B)。实验也证实ATF4 mRNA水平在敲低实验前后并没有显著变化,这表明ATF4表达降低发生在翻译水平。这些结果表明在ATF4翻译中去甲基化酶发挥积极的作用。
那么上述现象是由于去甲基化酶本身的结合还是随后的m6A修饰程度的改变,影响了ATF4的翻译?作者巧妙地使用shRNA沉默甲基转移酶复合物的核心亚基METTL3、METTL14,证明了m6A修饰程度下降会促进ATF4翻译(图3C、D)。而沉默MEF细胞中的甲基转移酶既不影响eIF2α信号通路,也不影响ATF4 mRNA的稳态水平。由此可说,饥饿诱导的ATF4翻译受到了mRNA上动态变化的m6A调控。
uORF2甲基化控制ATF4的翻译
图4 uORF2甲基化影响ATF4翻译
那到底是ATF4哪个位置的甲基化影响它的翻译?ATF4 mRNA具有较短的3’UTR,而它的5’UTR是带有调控性的uORF。为探究mRNA甲基化对ATF4翻译的影响,作者使用m6A-seq对有或没有氨基酸饥饿处理的MEF细胞进行了全局的甲基化分析。从ATF4的5’UTR到CDS出现多个m6A peak,但在3’UTR区没有(图4A)。有趣的是,在氨基酸饥饿处理时,只有uORF2(甲基化位点定位在A225)区域出现近3倍的m6A水平下降(图4B)。uORF2甲基化在敲低ALKBH5或 FTO的细胞中得到了恢复(图4C)。
为解释uORF2甲基化在ATF4翻译中的潜在作用,在Fluc reporter中引入了一个A225G突变,以阻止在该特定位点的m6A修饰。与野生型对照相比,A225G突变体在饥饿应答中表现出更高的Fluc水平(图4D),这与uORF2甲基化在ATF4翻译中的负作用是一致的。这些结果确立了在ISR期间uORF2甲基化对ATF4翻译的调控作用。
5’UTR甲基化控制起始密码子选择
图5 uORF2 甲基化起始密码子选择
uORF2甲基化是如何调控uORF2本身以及ATF4编码区的翻译?m6A修饰会对uORF2翻译施加了两种相反的作用:1)m6A位于uORF2内,可能作为核糖体延伸的路障;2)uORF2甲基化有利于uORF2翻译,可能是将扫描或迁移的核糖体定位在uORF2的起始密码子附近。不管怎样,这两种机制都会导致ATF4下游编码区的翻译受到抑制。m6A标记的检查点存在提供了一个故障保护机制,以阻止跳动的核糖体在营养丰富的条件下启动下游CDS的翻译(图5A)。作者用Toeprinting Assay和A225G突变体实验证实5’UTR甲基化起到了阻碍核糖体迁移的作用,从而增加了选择上游起始密码子的可能性,否则这些起始密码子将被跳过(图5B、C)。
5’UTR甲基化影响全局的选择性翻译
图6 m6A指导全局选择性翻译
考虑到5’UTR的动态甲基化变化对营养饥饿的响应,差异的m6A修饰可能是通过影响核糖体扫描过程来控制可变起始密码子的选择。作者采用m6A-seq分析营养缺乏前后细胞中的m6A谱。观察到5’UTR中甲基化普遍上升,而起始密码子后的m6A水平却相应下降(图6A)。为探讨起始密码子附近mRNA甲基化的变化是否与TIS选择相关,作者平行分析了QTI-seq和m6A-seq数据。对于没有uTIS密码子的转录本,聚类分析显示在注释的起始密码子 (aTIS) 周围核糖体密度和m6 A 水平存在协调变化;然而,对于携带多个TIS的转录本,aTIS密度和m6A水平变化之间的相关性较弱(图6B)。一个典型的例子,编码溶酶体加工蛋白COPB2的基因在营养饥饿时在aTIS下游的m6A明显下降(图 6C)。这些提示了一种以前未被重视的机制,m6a通过保留起始核糖体来控制翻译效率。
值得注意的是,许多5’UTR的uORF都是从非AUG起始密码子开始的,如CUG。作者推断5’UTR甲基化,通过保留扫描核糖体,可以促进在非最佳序列背景下选择非经典TIS。事实上,在QTI-seq捕获的所有uTIS中,大部分带有下游m6A修饰的uTIS密码子具有相对较高的TIS信号(图6D)。增加的5’UTR甲基化尤其增加非AUG密码子的信号。这些结果表明,m6A引导的选择性翻译在ISR期间具有更广泛的作用。
肝脏特异性Fto转基因小鼠存在选择性翻译
图7 肝脏特异性Fto转基因小鼠的选择性翻译
作者继续以肝脏特异性Fto转基因小鼠为模型,探究在mRNA甲基化的生理作用。采用m6A-seq检测肝脏裂解物中甲基化的情况。与MEF细胞相比,肝脏中5’UTR表现出更高的m6A水平(图7A)。固体组织中mRNA的翻译控制可能比培养细胞更容易受到mRNA 甲基化变化的影响。令人意外的是,即使在正常摄食条件下,FTO转基因小鼠肝裂解物也显示出比野生型更高的ATF4蛋白水平(图7B)。尽管Atf4 mRNA的基础水平略有升高,但Atf4蛋白水平的更多上升表明mRNA甲基化调节翻译在体内是成立的。这个结果得到了Ribo-seq实验的证实(图7C)。那FTO过表达和体内选择性翻译之间有怎样的关系?与 5’UTR甲基化促进uTIS选择的发现一致,相对于CDS,FTO过表达会导致5’UTR的核糖体密度降低(图7D)。为证实5’UTR甲基化的区域效应,作者根据5’UTR甲基化改变情况对转录本进行了分层。对于Fto转基因样品中5’UTR m6A水平下降的转录本,可以观察到5’UTR/CDS比率下降(图7E )。这些结果表明5’UTR甲基化的动态变化不仅有利于 ATF4的选择性翻译,而且也有助于ISR期间全局的选择性翻译。
研究总结
氨基酸饥饿诱导的ATF4翻译受m6A甲基化调控。翻译起始的全局分析显示5’UTR的 m6A调控起始密码子选择,进而控制选择性翻译。
延伸阅读——m6A调控翻译的相关研究
1. Slobodin, B., Han, R., Calderone, V., Vrielink, J.A.F.O., Loayza-Puch, F., Elkon, R., and Agami, R. Transcription impacts the efficiency of mRNA translation via co-transcriptional N6-adenosine methylation. Cell 2017 169, 326–337.e12.
2. Zhou J, Rode KA, Qian SB. m6A: A novel hallmark of translation. Cell Cycle 2016 15(3):309-10.
3. Zhou J, Wan J, Gao, X, Zhang X, Jaffrey SR and Qian SB. Dynamic m6A mRNA methylation directs translational regulation of heat shock response. Nature 2015 526(7574):591-4.
4. Meyer KD, Patil DP, Zhou J, Zinoviev A, Skabkin MA, Elemento O, Pestova TV, Qian SB, Jaffrey SR. 5' UTR m6A Promotes Cap-Independent Translation. Cell 2015 163(4):999-1010.
相关阅读推荐