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Nature Biotechnology | 突破领域瓶颈!David Liu首次对m6A定点遗传操作

枫叶 iNature 2023-01-10



iNature


N6-甲基腺苷(m6A)是人类中最广泛的内部信使RNA修饰。尽管最近在理解m6A的生物学作用方面取得了进展,但是无法在单个转录物中专门安装m6A位点,这阻碍了阐明特定m6A的存在与表型结果之间因果关系。

2020年6月29日,博德研究所David Liu在Nature Biotechnology 在线发表题为“Programmable m6A modification of cellular RNAs with a Cas13-directed methyltransferase”的研究论文,该研究证明了具有截短的METTL3甲基转移酶结构域或者是METTL3:METTL14甲基转移酶复合物与核定位dCas13融合体,可以对细胞质RNA进行特异性m6A掺入,而前者的融合蛋白脱靶活性特别低。

跨多个位点的独立细胞测定法证实,这种靶向RNA甲基化(TRM)系统以高特异性介导了有效的m6A安装在内源RNA转录物中。最后,该研究表明TRM可以诱导m6A介导的转录本丰度变化和选择性剪接。这些发现将TRM确立为用于靶向转录组工程的工具,可以揭示单个m6A修饰的作用并分析其功能作用。

另外,2020年6月22日,博德研究所David Liu团队在Nature Biotechnology 在线发表题为“Genome editing with CRISPR–Cas nucleases, base editors, transposases and prime editors”的综述文章,该综述首先描述已表征的Cas9和Cas12核酸酶的天然变异体,并详细介绍具有扩大的靶向范围和特异性的Cas9和Cas12核酸酶变异体的开发。接下来,该综述讨论碱基编辑器的开发和应用,这些编辑器可精确安装点突变而无需双链DNA断裂(DSB)或供体DNA模板。最后,该综述总结了新兴的CRISPR–Cas基因组编辑工具,包括介导大片段DNA重排的Cas转座子和重组酶,以及主要编辑器,它们以取代原始DNA序列的方式直接将编辑后的序列复制到目标DNA位点(点击阅读)。

2020年6月12日,博德研究所David R. Liu团队在Cell 在线发表题为“Determinants of Base Editing Outcomes from Target Library Analysis and Machine Learning”的研究论文,该研究在哺乳动物细胞中38,538个基因组整合靶标上表征了11个胞嘧啶和腺嘌呤碱基编辑器(CBE和ABE)的序列-活性关系,并使用所得结果训练了BE-Hive,这是一种机器学习模型,可准确预测碱基编辑基因型结果(R ≈0.9)和效率(R≈0.7)。研究人员以≥90%的准确度纠正了3388个与疾病相关的SNV,其中包括675个等位基因,其“旁观者”核苷酸被BE-Hive正确预测,因此无法编辑。该研究发现了以前无法预测的C-to-G或C-to-A编辑的决定因素,并利用这些发现以≥90%的准确性纠正了174个病原性SNV的编码序列。最后,该研究利用BE-Hive的见识来设计新颖的CBE变体,以调节编辑结果。这些发现启发了碱基编辑,实现了以前难以处理的目标的编辑,并为新的基础编辑器提供了改进的编辑功能。



对DNA和蛋白质的动态共价修饰在调节基因表达中起着重要作用。最近显示,RNA可通过其自身的转录后修饰来调节基因表达,包括伪尿苷(idine),5-甲基胞嘧啶(m5C),N1-甲基腺苷(m1A)和N6-甲基腺苷(m6A)。在已知的内源性细胞RNA修饰中,m6A在真核mRNA中最为丰富,并且已被证明可改变染色质的可及性,RNA剪接,RNA的核输出,RNA稳定性和翻译效率。

转录组范围m6A作图的高通量测序技术的进步也将m6A与广泛的细胞功能联系在一起,包括干细胞增殖和分化,细胞热休克反应,精原细胞分化,母体向合子转变, X染色体失活,DNA损伤反应,昼夜节律功能,肿瘤发生,长期记忆和抗肿瘤免疫力。 

m6A的水平由m6A编写器(特别是METTL3–METTL14复合体)和檫除器(如ALKBH5和FTO)控制。m6A的下游功能由识别m6A和调节mRNA加工的阅读器蛋白介导。这些m6A介导的调节途径影响许多生物学过程,例如发育,应激反应,免疫和神经元功能。尽管人们越来越认识到m6A和其他RNA修饰在生物学和疾病中的重要性,但我们对它们的特定功能的理解仍然远远落后于许多DNA和蛋白质修饰,部分原因是缺乏对特定mRNA修饰的操作。

该研究证明了具有截短的METTL3甲基转移酶结构域或者是METTL3:METTL14甲基转移酶复合物与核定位dCas13融合体,可以对细胞质RNA进行特异性m6A掺入,而前者的融合蛋白脱靶活性特别低。

跨多个位点的独立细胞测定法证实,这种靶向RNA甲基化(TRM)系统以高特异性介导了有效的m6A安装在内源RNA转录物中。最后,该研究表明TRM可以诱导m6A介导的转录本丰度变化和选择性剪接。这些发现将TRM确立为用于靶向转录组工程的工具,可以揭示单个m6A修饰的作用并分析其功能作用。


参考消息:
https://www.nature.com/articles/s41587-020-0572-6



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