漫谈16S的前世今生
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16S的基础概念
16S rDNA是细菌的系统分类研究中最有用的和最常用的分子钟，其种类少，含量大（约占细菌RNA含量的80％），分子大小适中，存在于所有的生物中，其进化具有良好的时钟性质，在结构与功能上具有高度的保守性，素有“细菌化石”之称。在大多数原核生物中rDNA都具有多个拷贝，5S、16S、23S rDNA的拷贝数相同。16S rDNA由于大小适中，约1.5Kb左右，既能体现不同菌属之间的差异，又能利用测序技术较容易地得到其序列，故被细菌学家和分类学家接受。
关键词：普遍、保守、大小适中、可变区！
1、16S rRNA 普遍存在于原核生物中。 rRNA 参与生物蛋白质的合成过程，其功能是任何生物都必不可少的，而且在生物进化的漫长历程中保持不变，可看作为生物演变的时间钟。
2、在 16S rRNA 分子中，既含有高度保守的序列区域，又有中度保守和高度变化的序列区域，因而它适用于进化距离不同的各类生物亲缘关系的研究。
3、16S rRNA 的相对分子量大小适中，约 1540 个核苷酸，便于序列分析。
4、可变区序列因细菌不同而异，恒定区序列基本保守，所以可利用恒定区序列设计引物，将16S rDNA片段扩增出来，利用可变区序列的差异来对不同菌属、菌种的细菌进行分类鉴定。
16S的结构
16S rRNA基因序列包括9个可变区和10个保守区，保守区序列反映了物种间的亲缘关系，而可变区序列则能体现物种间的差异。
16S拥有9个可变区域，其结构和分布，如下图所示：
图1. 引物与16S可变区的相对位置[8]
图2. 嗜酸乳杆菌16S为例展示引物和可变区位置[8]
基于16S全长的菌种鉴定
（一代测序技术）
工作对象：已培养的纯菌落
所用技术：一代测序仪3730
工作流程：
16S全长常用引物序列：
| Name | Sequences |
|---|---|
| 8F | AGAGTTTGATCCTGGCTCAG |
| 1492R | GGTTACCTTGTTACGACTT |
| sgF | AGAGTTTGATCATGGCTCAG |
| sgR | TAGGGTTACCTTGTTACGACTT |
试剂成本： <100元
优点：可辅助常规菌种鉴定方法，如显微形态和培养特征以及理化特性包括营养类型、碳氮源利用能力、各种代谢反应、酶反应和血清学反应等方法，提高菌种鉴定的准确度。
缺点：仅能用于纯菌！仅能用于纯菌！仅能用于纯菌！
基于16S的菌群结构分析（二代测序）
工作对象：临床样本（如粪便、脑脊液、血液、尿液等）、环境样本（土壤、污水等）
所用技术：二代测序仪，如Illumina的Hiseq和Miseq、Thermo的Ion Torrent，以及Roche的454（已停产）
工作流程：
部分常用引物序列：Table 1. Primer selection table for specific 16S rRNA gene region to be amplified.
试剂成本：~400元/样本
优点：通过检测16S rDNA的序列变异和丰度，反映样本中细菌的分类和丰度,获得样本物种分类，物种丰度，种群结构，系统进化，群落比较等诸多信息，可用于临床样本的未知病原菌检测。
缺点：（1）受限于二代测序的读长，目前只能最多测16S九个可变区中的2个，一般为V3-V4区。因此对菌群的分辨率，部分菌种只能分辨到属水平。
（2）缺少SOP实验方案。不同实验因素对实验结果影响较大。详情可参照前贴 【好文共赏】宏基因组实验的那些坑-16S扩增子建库方法的各影响因素
（3）相较于WGS宏基因组测序，16S宏基因组也可用于功能学方面研究，但不准确。详情可参照前贴 微微，我想测个序啊（宏基因组篇）
16S的未来：三代测序技术
读长短分辨率低咋办？上三代测序啊！
Pacbio测序技术用于16S宏基因组，已有相关的文献发表
参考文章：High-resolution phylogenetic microbial community profiling 附图2
一次上机测通9个可变区，分辨率高，准确度高，更适用于临床样本中未知病原检测和其他科学研究应用。
可惜，由于未解决样本pooling等原因，其价格居高不下，目前还在八千元一个样本的水平，高昂的费用极大的制约了科研人员使用的积极性。
此外，新近进入中国市场的Nanopore目前尚未由应用于16S的实际案例出现。相较于Pacbio，Nanopore测序技术在灵活度方面更胜一筹，是否能用于16S相关研究，笔者对其报以极大的期待。
Reference
Illumina官方16S建库手册 https://www.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/chemistry_documentation/16s/16s-metagenomic-library-prep-guide-15044223-b.pdf
Caporaso JG,et al. 2011. Global patterns of 16S rRNA diversity at a depth of millions of sequences per sample. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (Suppl):4516–4522. doi:10.1073/pnas.1000080107.
Parada AE, et al. 2015. Every base matters: assessing small subunit rRNA primers for marine microbiomes with mock communities, time series and global field samples. Environ Microbiol. doi:10.1111/1462-2920.13023.
Apprill A, et al. 2015. Minor revision to V4 region SSU rRNA 806R gene primer greatly increases detection of SAR11 bacterioplankton. Aquat Microb Ecol 75:129–137. doi:10.3354/ame01753.
Jiang, H., et al. 2006. Microbial Diversity in Water and Sediment of Lake Chaka, an Athalassohaline Lake in Northwestern China. Applied and Environmental Microbiology. 72 (6): 3832-3845. doi:10.1128/AEM.02869-05.
Walker, A.W., et al. 2015. 16S rRNA gene-based profiling of the human infant gut microbiota is strongly influenced by sample processing and PCR primer choice. Microbiome 3:26. doi: 10.1186/s40168-015-0087-4.
Muyzer, G. et al. 1993. Profiling of complex microbial populations by denaturing gradient gel electrophoresis analysis of polymerase chain reaction-amplified genes coding for 16S rRNA. Appl. Environ. Microbiol. 59:3 695-700.
http://omegabioservices.com/index.php/16s-reference/
https://teachthemicrobiome.weebly.com/sequencing-the-microbiome.html
以上部分资料参考于网络，并感谢宏基因组讨论群各位老师提供相关资源，在此致谢。
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