Nature︱新发现!炎性淋巴细胞或是介导中枢神经系统炎症的新靶点?
撰文︱付慧敏
责编︱王思珍
多发性硬化症(multiple sclerosis,MS)是一种由对中枢神经系统(CNS)自我抗原有反应的促炎性T细胞驱动的自身免疫性疾病[1]。最新研究表明,类似的途径可驱动神经退行性疾病的进程,包括阿尔茨海默病和帕金森病[2-5]。然而,控制CNS中促炎性T细胞的反应通路仍不清楚。
近期,美国康奈尔大学的Gregory F. Sonnenberg教授课题组在Nature上发表了题为“Antigen-presenting innate lymphoid cells orchestrate neuroinflammation”的研究文章。他们发现了一种炎性3型天然淋巴细胞(ILC3s)群体,在神经炎症的背景下,ILC3s 来源于血液循环,在CNS中成熟,作为真正的抗原呈递细胞发挥作用,并促进促炎性T细胞的生长,利用外周组织驻留ILC3s有预防自身免疫性疾病的潜力。
为了理解自身免疫性神经炎症中的ILC3s的作用,研究者首先在RORγt启动子控制下的eGFP小鼠,即Rorc-eGFP小鼠中,诱发实验性自身免疫性脑脊髓炎(experimental autoimmune encephalomyelitis,EAE),从而构建了MS小鼠模型。与对照组小鼠相比,从发病到EAE慢性期,ILC3s在CNS、硬脑膜和颈淋巴结的数量明显增加。对EAE不同组织中分类纯化的ILC3s进行RNA测序,他们发现了转录特征的显著差异。且CNS中的ILC3s可独特表达Ccr5、Itgal、Itgb2和Itgb7转运受体编码基因,这些受体在淋巴细胞通过循环进入炎症CNS的过程中至关重要(图1 f)。流式细胞术分析结果显示CNS中的ILC3s只来自于血液循环,且在EAE期间,血液循环中的ILC3样细胞数量明显增加(图1 g, h)。相对于年龄和性别匹配的对照组,MS患者血液中的RORγt+ ILC3样细胞的频率明显增加(图1 i)。这表明ILC3s借助血液循环中迁移到CNS,并表现出独特的促炎症表型。
图1 在神经炎症期间,ILC3s的一个独特亚群浸润到中枢神经系统
(图源:Grigg, John B et al., Nature, 2021)
ILC3s通过抗原呈递和Ⅱ类主要组织相容性复合物(MHCII)调节适应性免疫[6]。在此,作者发现,在EAE期间,CNS中经血液循环来源的ILC3s成熟后表达MHCII、共刺激分子(如CD80,CD86)和其它途径分子以激活炎性CNS中T细胞,而外周组织驻留的ILC3s并无此效应。脑源性T细胞的致病活性依赖于CNS中MHCII+髓系细胞的局部再活化,这一过程依赖于血管周围相关的传统树突状细胞(cDCs),它们可在EAE期间刺激T细胞。然而,是否有其它额外的MHCII+细胞刺激CNS髓鞘白质中的T细胞呢?分析发现,EAE期间大脑和脊髓中的ILC3s主要在富含髓鞘的脑干、脊髓和小脑等CNS病灶中富集,并存在于浸润T细胞中(图2)。此外,从CNS中分类纯化的ILC3s可吸收pHrodo红色标记的髓磷脂碱性蛋白,共培养可促进CNS髓鞘特异性T细胞产生促炎细胞因子IFNγ、TNF、IL-17A和GM-CSF。这些数据表明ILC3s是自身免疫性神经炎症过程中CNS真正的抗原提呈细胞。
图2 中枢神经系统相关的ILC3s重新刺激中枢神经系统的脑源性T细胞
(图源:Grigg, John B et al., Nature, 2021)
那么,抗原呈递ILC3s在CNS中的功能是怎样的呢?在H2-Ab1-floxed小鼠与Rorccre小鼠杂交得到的MHCIIΔILC3小鼠中,他们观察到ILC3s中MHCII的表达特异性丧失,但与对照组相比,淋巴结和CNS中巨噬细胞、小胶质细胞、cDCs亚群或单核细胞中的MHCII水平无显著变化(图3 a)。在诱导了EAE的小鼠中,在主要由CD4 T细胞和ILC3s组成的淋巴细胞中检测到eYFP(增强型黄色荧光蛋白)(图3 b)。相对于对照组,MHCIIΔILC3 小鼠的髓磷脂特异性T细胞的数量、CNS中产生IFNγ、IL-17A、TNF的髓鞘特异性T细胞数量减少,且脊髓中的免疫细胞浸润水平大大降低(图3 c, d, e)。在两种主动EAE模型中,MHCIIΔILC3 小鼠不能发展成为脱髓鞘疾病(图3 f)。这些数据表明:在神经炎症期间,抗原呈递的ILC3s对CNS中CD4 T细胞应答是必不可少的。
图3 中枢神经系统中的MHCII+ ILC3可促进自身免疫性T细胞和脱髓鞘疾病
(图源:Grigg, John B et al., Nature, 2021)
最后,他们发现,从EAE小鼠肠系膜淋巴结中纯化的ILC3s在共培养过程中,并不能诱导髓磷脂特异性T细胞产生细胞因子,而这一过程可以通过CD28交联而逆转(图4 a)。是否外周组织驻留的ILC3s可用于髓磷脂特异性T细胞体内耐受呢?课题组将天然的髓磷脂特异性T细胞转移到STOPMOG小鼠(诱导髓鞘抗原肽)、ILC3MOG小鼠(选择性地针对MHCII+ ILC3s)体内,并诱导EAE。结果发现,髓磷脂特异性T细胞中促凋亡分子BIM表达明显增加(图4 b)。与对照组小鼠相比,诱导了EAE的ILC3MOG小鼠中循环髓磷脂特异性T细胞的频率明显降低,颈淋巴结的髓磷脂特异性CD4 T细胞的频率和数量也明显减少(图4 c, d)。在ILC3MOG小鼠的CNS中,髓磷脂特异性CD4 T细胞以及产生IFNγ、IL-17A和TNF的髓磷脂特异性T细胞的数量和频率明显减少(图4 d, e)。在2种EAE模型中,ILC3MOG小鼠浸润到脊髓白质的免疫细胞减少,脱髓鞘疾病的水平明显降低(图4 f, g)。为了规避可能出现的胸腺选择改变,他们使用了一种新型的他莫西芬诱导RorccreERT2小鼠与STOPMOG 小鼠杂交产生ILC3IND-MOG小鼠,并观察到只有ILC3IND-MOG小鼠能够免受EAE的影响(图4 h)。这些数据表明:若以呈现髓鞘抗原为目标,外周组织驻留的ILC3s具有消除自身免疫T细胞、诱导耐受性和保护神经炎症的能力。
图4 外周组织驻留的ILC3s可预防神经炎症
(图源:Grigg, John B et al., Nature, 2021)
该研究具有临床意义。作者发现炎性3型天然淋巴细胞(ILC3s)群体在多发性硬化症(MS)患者的血液和脑脊液中增加,未来的研究应该揭示这些循环的来源。CNS中的ILC3s与抗原呈递的cDCs起着互补但不相干的作用,在进入CNS后重新刺激T细胞[7]。当靶向性地通过MHCII表达同源抗原时,可以利用外周的组织驻留淋巴组织诱导样ILC3s来促进T细胞耐受并防止神经炎症。这些不同的ILC3亚群一个显著特点是IFNγ依赖型的CNS相关ILC3s中的抗原呈递和共刺激途径上调。然而,这些激活途径是否多余,需进一步研究。但很明显,外周组织驻留的ILC3s以独立于IFNγ的方式表达MHCII[6],而且CD28的参与足以阻断其耐受性功能。总之,本研究在自身免疫性神经炎症背景下对ILC3亚群的功能进行了扩展,为MS和其它脱髓鞘或神经退行性疾病提供潜在的治疗机会。
原文链接:https://doi.org/10.1038/s41586-021-04136-4
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【1】Dendrou, C. A., Fugger, L. & Friese, M. A. Immunopathology of multiple sclerosis. Nat.Rev. Immunol. 15, 545–558 (2015).
【2】Togo, T. et al. Occurrence of T cells in the brain of Alzheimer’s disease and otherneurological diseases. J. Neuroimmunol. 124, 83–92 (2002).
【3】 Monsonego, A. et al. Increased T cell reactivity to amyloid β protein in older humans and patients with Alzheimer disease. J. Clin. Invest. 112, 415–422 (2003).
【4】Sulzer, D. et al. T cells from patients with Parkinson’s disease recognize α-synucleinpeptides. Nature 546, 656–661 (2017).
【5】Lindestam Arlehamn, C. S. et al. alpha-Synuclein-specific T cell reactivity is associated with preclinical and early Parkinson’s disease. Nat. Commun. 11, 1875 (2020).
【6】Hepworth, M. R. et al. Immune tolerance. Group 3 innate lymphoid cells mediate intestinal selection of commensal bacteria-specific CD4+ T cells. Science 348, 1031–1035 (2015).
【7】Mundt, S. et al. Conventional DCs sample and present myelin antigens in the healthy CNS and allow parenchymal T cell entry to initiate neuroinflammation. Sci. Immunol. 4, eaau8380 (2019).
制版︱王思珍
本文完