STAR Protocols︱李海星团队发表基于腕表PCR基因组步移获取未知侧翼DNA的实验方案
基因组步移(Genome-walking)是一种获取未知侧翼DNA的技术,已成为分子生物学及相关领域不可或缺的一部分[1,2]。最早的步移技术基于繁琐的基因组文库构建与筛选;随后逐步发展出了简单、快速且可靠的PCR基方案[3,4]。PCR方法种类繁多,但依据原理总体上可以分为三类:(1)反向PCR;(2)连接介导的PCR;(3)随机引发PCR。前两类技术涉及限制酶切割和连接步骤。随机引发PCR则无需在扩增前对模板进行任何处理,但其步移效率和非特异性背景仍有待改进[5-8]。
2023年1月20日,南昌大学中德联合研究院李海星研究员课题组在Cell子刊STAR Protocols杂志在线发表了题为“Protocol to access unknown flanking DNA sequences using Wristwatch-PCR for genome-walking”的实验方案文章(Protocol)。该方案设计了三条步移引物即腕表引物(Wristwatch primer,WWP),其3’端的12 bp和5’端的3 bp序列一致,而中间10 bp则两两之间完全错配。因此,仅在温度足够低的情况下,一条WWP才能退火至另一WWP的互补序列,并形成一种能选择性地富集侧翼序列的腕表样结构。该方法因此被称为腕表PCR(Wristwatch PCR)。通过调取微生物和水稻已知基因的侧翼序列,验证了方法的可行性。腕表PCR可成为现有基因组步移技术的替代方案。
该研究设计了一套共3条WWP,其特征是每两条WWP之间具有相同的5’端(12bp)和3’端(3bp),以及错配的中心区域(10bp)(表1)。任意两条WWP只能在低温退火,并形成腕表样结构。三条WWP因使用顺序不同,可形成三组不同的引物组合(表2)。在每次步移实验中,三个WWP组合分别与一套巢式特异性引物配对,平行进行三组WW-PCR扩增。每组WW-PCR包括三轮(一级、二级、三级)巢式扩增,分别由该WWP组合顺序配对巢式特异性引物进行。
表1本研究使用的腕表引物
(表源:Wang LQ, et al., STAR Protoc, 2023)
表2 腕表引物组合及其与特异性引物组的配对
(表源:Wang LQ, et al., STAR Protoc, 2023)
注:WWP是指Wristwatch primer即腕表引物;GSP是指gene-specific primer即基因特异性引物
每轮WWP-PCR执行一个低严谨型循环,以促使WWP在基因组模板上任意退火,或定向退火至前一轮扩增子的WWP位点,从而合成一个单链DNA(ssDNA)池。其中,目标ssDNA的3′末端为特异性引物(GSP)的互补序列,5’末端为WWP序列;在随后的一个高温循环中,GSP退火至其位于3′末端的互补区,延伸得到一条两端分别为完整的GSP和WWP的双链;在剩余的高温循环中,该双链呈指数扩增。非目标ssDNA因不存在任何引物的完整退火位点而不能被扩增。经过三轮巢式PCR,可有效地富集目标产物,同时消除非特异性背景。WWP-PCR的原理和实验步骤如下(图1,2),一般仅需两轮PCR,即可得到目的条带。该方法完全基于PCR扩增,且WWP对任何基因组通用。
图1 腕表PCR原理图
(图源:Wang LQ, et al., STAR Protoc, 2023)
图2 腕表PCR方案流程图
(图源:Wang LQ, et al., STAR Protoc, 2023)
为了验证WW-PCR的可行性,用其分离短乳杆菌谷氨酸脱羧酶基因和水稻潮霉素的侧翼序列。结果表明,每个WW-PCR获得的清晰条带均为目标产物,且每次可步移达4 kb,显示出方法的高特异性和高效率。一些WW-PCR产生了多条DNA带,这是由于初级WWP在低退火循环中部分退火到了未知区域上的多个位点。由于巢式GSP之间的位置关系,二级扩增产物略大于三级产物(图3)。
图3 腕表PCR基因组步移验证结果
(图源:Wang LQ, et al., STAR Protoc, 2023)
通讯作者:李海星(左);第一作者:王凌琴(右)
(照片提供自:李海星实验室)
李海星,博士,研究员,博士研究生导师,南昌大学赣江特聘教授、江西省主要学科学术与技术带头人领军人才,江西省青年科学家培养对象,江西省杰出青年科学基金获得者,江西省优秀博士学位论文获得者,食品科学与技术国家重点实验室固定研究人员,江西省优秀硕士论文指导教师;主要从事微生物工程方面的研究,主持省部级或以上项目10余项,发表SCI论文20余篇,参与编写专著2部,获江西省自然科学奖三等奖2项,广东省科技进步奖二等奖1项。
欢迎加入岚翰生命科学群:文献学习2
参考文献(上下滑动阅读)
[1] Ashrafmansouri SS, Kamaladini H, Haddadi F, et al. Simple innovative adaptor to improve genome walking with convenient PCR. J. Genet. Eng. Biotechnol. 2020. 18: 64.
[2] Sun T, Jia M, Wang L, et al. DAR-PCR: a new tool for efficient retrieval of unknown flanking genomic DNA. AMB Express. 2022. 12: 131.
[3] Myrick KV, Gelbart WM. Universal fast walking for direct and versatile determination of flanking sequence. Gene. 2022. 284: 125-131.
[4] Zeng T, Zhang D, Li Y, et al. Identification of genomic insertion and flanking sequences of the transgenic drought-tolerant maize line "SbSNAC1-382" using the single-molecule real-time (SMRT) sequencing method. PLoS One. 2020. 15: e0226455.
[5] Ochman H, Gerber A, Hartl D. Genetic applications of an inverse polymerase chain-reaction. Genetics. 1988. 120: 621-623.
[6] Rosenthal A, Jones D. Genomic walking and sequencing by oligo-cassette mediated polymerase chain reaction. Nucleic Acids Res. 1990. 18: 3095-3096.
[7] Liu Y, Whittier R. Thermal asymmetric interlaced PCR: automatable amplification and sequencing of insert end fragments from PI and YAC clones for chromosome walking. Genomics. 1995. 25: 674-681.
[8] Chang K, Wang Q, Shi X, et al. Stepwise partially overlapping primer-based PCR for genome walking. AMB Express. 2018. 8: 77.