NC文章用微量m6A测序揭开滤泡辅助T细胞分化新机制 | m6A专题
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1. METTL3影响Tfh分化和免疫生发中心反应
作者将Mettl3-flox小鼠跟Cd4-Cre小鼠杂交后获得Mettl3fl/fl Cd4-Cre小鼠,可以在T细胞中METTL3条件性缺失表达。使用LCMV-Armstrong病毒感染小鼠8天后,CD44+CXCR5+ TFH细胞数量在Mettl3fl/fl Cd4-Cre小鼠中显著降低。尽管Th1细胞整体水平也随着Mettl3缺失而降低,但是METTL3缺失的CD4+T细胞显著倾向于向CD44+CXCR5- TH1细胞分化。
作者还发现 Th1细胞表达的T-bet水平远高于TFH细胞,METTL3缺陷型TFH细胞上的CXCR5、PD-1、ICOS和Bcl-6的表达水平显着降低。
总之METTL3缺失严重损害TFH细胞分化。
TFH细胞参与B细胞分化过程中,LCMV-Armstrong病毒感染小鼠8天后GL-7+Fas+ GC B细胞、PNA+Fas+ GC B细胞、IgDlowCD138+浆细胞以及LCMV特异性IgG均显著降低。
作者还使用了KLH免疫模型查看了其他辅助T细胞谱系分化后发现,GATA3+和IL-4生成细胞及Foxp3+细胞在Mettl3fl/fl/Cd4-Cre小鼠中并未发生大的改变。这表明TH1细胞和Treg细胞分化不受METTL3影响。有趣的是,在METTL3缺陷小鼠中,产生RORγ+和IL-17a的细胞均显著减少,表明METTL3对蛋白质免疫后体内TH17细胞分化至关重要。
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2. METTL3对于TFH细胞早期激活分化至关重要
急性病毒感染期间,效应CD4+T细胞于TFH细胞和TH1细胞于免疫生发中心分化之前出现。作者将CTV标记的两种Naïve CD4+T细胞(分为Ctrl SMARTA CD4+T细胞和Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞)分别转移到对应的小鼠体内。病毒急性感染后,Ctrl SMARTA CD4+T细胞在病毒感染后表现出强烈增殖,并产生产生了大量的Bcl-6+ CXCR5+TFH细胞。而Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞表现出延迟增殖,且Bcl-6+ CXCR5+TFH细胞要显著低于Ctrl组。
此外,METTL3缺失导致CXCR5+细胞中的TCF-1表达也显着降低。Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA TFH细胞中,Tcf7、Cxcr5、Bcl6、Pdcd1和Icos的表达量均降低。
以上结果均表明,METTL3对于病毒急性感染早期的TFH细胞分化激活至关重要。
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3. METTL3对TFH细胞转录组表达谱的影响
由于METTL3缺失影响CXCR5表达,由于SLAM在因此作者使用了CD44和SLAM,来识别激活态CD4+T细胞中的TFH细胞和TH1细胞。作者接下来从Mettl3fl/fl Cd4-Cre小鼠和Ctrl小鼠中sort出了CD44+SLAMhigh TH1细胞和CD44+SLAMlow TFH细胞,进行转录组测序。功能富集分析表明,TFH细胞上调的基因主要集中在T细胞和病毒防御功能,下调基因主要富集在T细胞增殖和分化功能上。
作者使用特定筛选出的TFH细胞和GC中TFH细胞的特定基因集进行GSEA分析后发现,大部分基因都在WT的TFH细胞中富集,但是在METTL3缺失的TFH细胞中并没有富集到。
当GSEA分析采用了Th1、Th2、Th17和Treg细胞的特征基因集时,作者发现所有这些基因居然都富集在METTL3缺失的TFH细胞及Th1细胞中。这些分析表明METTL3缺失导致TFH细胞及Th1细胞转录组基因表达的紊乱。
Th细胞中几个核心基因Tcf7、Cxcr5、Bcl6、Pdcd1和Icos均在METTL3缺失的TFH细胞中低表达。GSEA分析表明,TCF-1激活基因集主要富集在WT的TFH细胞中,而TCF-1抑制基因主要富集在METTL3缺陷的细胞中。同时LEF1的mRNA表达也是在METTL3缺失的TFH细胞中显著降低。然而Bcl6和Gzmb的拮抗剂Prdm1,以及促凋亡调控因子Bcl2l11和Bax表达量则在METTL3缺失的TFH细胞中表达更高。
这些结果表明,METTL3通过激活TFH细胞但抑制Th1细胞谱系相关基因来调节TFH细胞分化程序。
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4. METTL3以m6A催化活性依赖性方式促进TFH细胞分化
作者设计了METTL3-WT及METTL3-Mut(催化结构域突变)载体,然后这些METTL3蛋白在具有逆转录病毒转导系统的Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞中表达。急性病毒感染后,使用EV空载体转染的Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞,可使用METTL3-WT而不是METTL3-Mut进行补救,并促进分化为TFH细胞。
此外,METTL3-WT的强制表达可恢复Mettl3fl/fl Cd4-Cre TFH和Th1的细胞数量,且Tcf7、Cxcr5、Bcl6、Pdcd1和Icos表达均有表达上升和恢复。总之,METTL3的m6A催化活性是TFH细胞分化的关键因素。
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5. Tcf在3’UTR上的m6A修饰调控其mRNA稳定性
由于特定的T细胞sort之后量不多,RNA得率也较低,常规需要20-30μg total RNA不能满足m6A测序的最低起始量。于是作者对Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞及Ctrl组进行微量m6A测序及生信分析。GO富集分析表明差异m6A的基因大部分与病毒防御、T细胞活化和分化相关。前面提到的几个关键的候选基因中,只有Tcf的mRNA在3’URTR有明显的peak信号,且METTL3的RIP-qPCR也从另一面做了证实。
由于m6A修饰的mRNA下游功能和诸多不同的reader蛋白相关,涉及可变剪切、蛋白翻译及mRNA稳定性等。放线菌素D实验证实,Tcf在METTL3缺失的T细胞中表现出显著下降趋势。
综上所述, METTL3通过催化Tcf7在3' UTR处的m6A修饰增强其mRNA稳定性,以确保TCF-1表达并促进TFH细胞的分化。
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6. TCF-1强制表达在METTL3缺陷小鼠中恢复了TFH细胞的分化
作者使用TCF-1过表达体系利用逆转录病毒转染到SMARTA CD4+T细胞中,病毒转染第8天后发现METTL3缺陷的SMARTA CD4+T细胞中TCF-1表达显著增加。
作者接下来分析SMARTA CD4+T细胞中的TFH细胞亚群中发现,Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞中表现出明显的CD44+ CXCR5+ TFH细胞分化缺陷。但是TCF-1过表达可补救Mettl3fl/fl Cd4-Cre SMARTA CD4+T细胞分化为TFH细胞的能力。
此外,TCF-1过表达增加了Mettl3fl/fl Cd4-Cre TFH细胞的数量,但是不增加Th1的细胞数量。同样PD-1high CXCR5+ GC TFH细胞也可以通过TCF-1过表达来补救。同时,TCF-1的强制表达可以在很大程度上恢复Mettl3fl/fl Cd4-Cre TFH细胞上TCF-1、CXCR5、PD-1、ICOS 和 Bcl-6 的表达水平。
这些数据共同证明METTL3稳定Tcf7 mRNA 表达以促进TFH细胞的分化。
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