【Biol Psychiatry】浙大陈忠教授团队揭示胆碱能环路参与癫痫发作的神经机制
癫痫是一种慢性中枢神经系统疾病,不分年龄。
全世界有大约5000万癫痫患者,使之成为全球范围内最常见的神经系统疾病之一。
近80%的癫痫患者生活在低收入和中等收入国家。
如果得到适当诊断和治疗,估计高达70%的癫痫患者不会出现癫痫发作。
与普通人群相比,癫痫患者的过早死亡风险要高出3倍。
在低收入国家,有四分之三的癫痫患者不能得到所需的治疗。
在世界许多地方,癫痫患者及其家庭遭到羞辱和歧视。
----世界卫生组织 2019年6月20日
2019年11月26日,《Biological Psychiatry》杂志在线刊登了浙江大学陈忠教授课题组题为“Direct septum-hippocampal cholinergic circuit attenuates seizure through driving somatostatin inhibition”的最新研究工作[6],他们首次发现MS胆碱能神经元发挥抗癫痫作用的精准神经环路机制,为临床精准治疗癫痫发作提供了新思路。
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内侧隔核是胆碱能神经元富集的核团,且其是癫痫灶点海马的胆碱能输入的主要来源,因此研究人员将目光聚焦于内侧隔核。在该研究中,陈忠教授课题组的研究人员首先利用浙大附属二院癫痫中心临床颞叶癫痫患者的核磁共振成像和弥散张量成像(可分别用于指证脑内核团结构及环路纤维的变化),发现颞叶癫痫患者基底前脑的内侧隔核区及其与海马之间的神经纤维联系均存在明显的萎缩,由此猜测内侧隔核与颞叶癫痫密切相关。
进一步,研究人员在癫痫动物模型中探究内侧隔核在颞叶癫痫中的潜在作用。文章中所用的颞叶癫痫动物模型是海马电点燃癫痫模型和海人藻酸颞叶癫痫模型,即通过在海马给予电刺激或致痫药物海人藻酸导致脑内神经元过度兴奋,进而产生癫痫发作行为并伴随癫痫样脑电。研究人员首先分别通过光遗传学选择性激活内侧隔核的胆碱能、谷氨酸能和GABA能神经元,发现激活内侧隔核的胆碱能神经元能够抑制颞叶癫痫发作,进而将课题聚焦内侧隔核胆碱能神经元。
结果
1、海马癫痫发作时MS胆碱能神经元活动受到抑制
图1 海马癫痫发作时MS胆碱能神经元活动受到抑制
2、MS胆碱能神经元参与TLE发作过程
图2 特异性激活MS胆碱能神经元抑制海马癫痫发作
图3 特异性抑制MS胆碱能神经元促进海马癫痫发作
3、内侧隔核到海马的直接胆碱能投射通路参与抗癫痫作用
图4 内侧隔核到海马的直接胆碱能投射通路参与抗癫痫作用
4、海马GABA能亚型SST神经元是MS胆碱能神经环路发挥的抗癫痫作用的下游效应神经元
图5 海马GABA能神经元介导MS胆碱能环路的抗癫痫作用
图6 SST神经元是MS胆碱能神经环路发挥的抗癫痫作用的下游效应神经元
结论
本篇文章借助神经示踪、在体光纤记录、全细胞膜片钳记录、光遗传学、化学遗传学、免疫组化、行为学等技术手段研究发现,MS胆碱能神经元在癫痫小鼠模型中发挥抗癫痫作用的精准神经环路机制,即通过直接投射到海马,激活下游SST阳性神经元发挥作用的。该研究为临床精准治疗癫痫发作提供了新思路。
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陈忠教授课题组常年致力于慢性脑病的发病机制及药物靶点发现研究,其中癫痫发病机制的研究是课题组重要的研究方向。课题组近年来在Neuron(F1000 Recommend)、Annals of Neurology、EBioMedicine(F1000 Recommend)、Neurotherapeutics、Neurobiology of Disease等国际著名期刊发表多项原创性工作,受到国内外学者的关注。该研究在前期工作的基础上,首次从临床和基础两个层面阐明了胆碱能环路在颞叶癫痫中的作用,补充了基于传统“兴奋性谷氨酸能传递与抑制性GABA能传递”失衡的传统发病机制学说,同时解析了海马不同细胞亚型GABA能神经元的作用异质性,有望为临床精准治疗颞叶癫痫提供新的药物靶点和治疗策略。
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参考文献:
[1] Keezer MR, Sisodiya SM, Sander JW (2016): Comorbidities of epilepsy: current concepts and future perspectives. Lancet Neurol. 15:106-115.
[2] Loscher W, Klitgaard H, Twyman RE, Schmidt D (2013): New avenues for antiepileptic drug discovery and development. Nat Rev Drug Discov. 12:757-776.
[3] Hamilton SE, Loose MD, Qi M, Levey AI, Hille B, McKnight GS, et al. (1997): Disruption of the m1 receptor gene ablates muscarinic receptor-dependent M current regulation and seizure activity in mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94:13311-13316.
[4] Nagao T, Alonso A, Avoli M (1996): Epileptiform activity induced by pilocarpine in the rat hippocampal-entorhinal slice preparation. Neuroscience. 72:399-408.
[5] Kokaia M, Ferencz I, Leanza G, Elmer E, Metsis M, Kokaia Z, et al. (1996): Immunolesioning of basal forebrain cholinergic neurons facilitates hippocampal kindling and perturbs neurotrophin messenger RNA regulation. Neuroscience. 70:313-327.
[6] Ying W, et al, (2019): Direct septum-hippocampal cholinergic circuit attenuates seizure through driving somatostatin inhibition. Biol Psychiatry. doi.org/10.1016/j.biopsych.2019.11.014.
[7] Morimoto K, Fahnestock M, Racine RJ (2004): Kindling and status epilepticus models of epilepsy: rewiring the brain. Prog Neurobiol. 73:1-60.
[8] Simon AP, Poindessous-Jazat F, Dutar P, Epelbaum J, Bassant MH (2006): Firing properties of anatomically identified neurons in the medial septum of anesthetized and unanesthetized restrained rats. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 26:9038-9046.
[9] Ben-Ari Y (1985): Limbic seizure and brain damage produced by kainic acid: mechanisms and relevance to human temporal lobe epilepsy. Neuroscience. 14:375-403.
[10] Coulter DA, McIntyre DC, Loscher W (2002): Animal models of limbic epilepsies: what can they tell us? Brain Pathol. 12:240-256.
[11] Mesulam MM, Mufson EJ, Wainer BH, Levey AI (1983): Central cholinergic pathways in the rat: an overview based on an alternative nomenclature (Ch1-Ch6). Neuroscience. 10:1185-1201.
[12] Dannenberg H, Pabst M, Braganza O, Schoch S, Niediek J, Bayraktar M, et al. (2015): Synergy of direct and indirect cholinergic septo-hippocampal pathways coordinates firing in hippocampal networks. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 35:8394-8410.
[13] Tsanov M (2015): Septo-hippocampal signal processing: breaking the code. Prog Brain Res. 219:103-120.
[14] Csicsvari J, Hirase H, Czurko A, Mamiya A, Buzsaki G (1999): Oscillatory coupling of hippocampal pyramidal cells and interneurons in the behaving Rat. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 19:274-287.
[15] Wickersham IR, Lyon DC, Barnard RJ, Mori T, Finke S, Conzelmann KK, et al. (2007): Monosynaptic restriction of transsynaptic tracing from single, genetically targeted neurons. Neuron. 53:639-647.
[16] Freund TF, Buzsaki G (1996): Interneurons of the hippocampus. Hippocampus. 6:347-470.
[17] Fishell G, Rudy B (2011): Mechanisms of inhibition within the telencephalon: "where the wild things are". Annual review of neuroscience. 34:535-567.